pektinészteráz | |
---|---|
A Dickeya dadantii - ból származó pektin-metilészteráz hexaszachariddal komplexben. EKT 2ntb [1] | |
Azonosítók | |
KF kód | 3.1.1.11 |
CAS szám | 9025-98-3 |
Enzim adatbázisok | |
IntEnz | IntEnz nézet |
BRENDA | BRENDA bejegyzés |
ExPASy | NiceZyme nézet |
MetaCyc | anyagcsere út |
KEGG | KEGG bejegyzés |
PRIAM | profil |
EKT struktúrák | RCSB PDB PDBe PDBj PDBsum |
Gén-ontológia | AmiGO • EGO |
Keresés | |
PMC | cikkeket |
PubMed | cikkeket |
NCBI | NCBI fehérjék |
CAS | 9025-98-3 |
A pektinészteráz (PE) ( EC kód 3.1.1.11 ) egy széles körben elterjedt sejtfalhoz kötődő enzim , amely számos olyan izoformát mutat be , amelyek hozzájárulnak a növényi sejtfal módosításához és későbbi elpusztításához. Minden magasabb rendű növényben megtalálható, valamint néhány baktériumban és gombában is megtalálható . A pektinészteráz elsősorban a sejtfal helyi pH -értékének megváltoztatásával fejti ki hatását , ami a sejtfal integritásának megsértéséhez vezet.
A pektinészteráz katalizálja a pektin észterezését pektáttá és metanollá . A pektin a növényi sejtfal egyik fő alkotóeleme. A növényekben a pektinészteráz fontos szerepet játszik a sejtfal anyagcseréjében a gyümölcsérés során. Növényi patogén baktériumokban, mint például az Erwinia carotovora és gombás kórokozókban, mint például az Aspergillus niger , a pektinészteráz részt vesz a növényi szövet macerációjában és lágy rothadásában. A növényi pektinészterázokat pektinészteráz inhibitorok szabályozzák, amelyek hatástalanok a mikrobiális enzimekkel szemben [2] .
A legújabb tanulmányok kimutatták, hogy a pektinészteráz expressziójának manipulálása számos élettani folyamatot befolyásolhat. A növényekben a pektinészteráz szerepet játszik a sejtfal mechanikai stabilitásának modulálásában a gyümölcsérés során , a sejtfal megnyúlásában a pollen csírázása és a pollencső növekedése során, a leszakadásban , a szár megnyúlásában, a gumótermésben és a gyökérfejlődésben. A pektinészterázról kimutatták, hogy szerepet játszik a növények kórokozói támadására adott válaszában is. A Nicotiana tabacum sejtfalhoz kötött pektinészteráza részt vesz a dohánymozaikvírus mozgásfehérjéjének gazdasejt-receptorának felismerésében , és ez a kölcsönhatás szükségesnek bizonyult a vírus sejtről sejtre történő transzlokációjához.
A pektinészteráznak a növényi sejtfal összetevőire gyakorolt hatása két, egymással homlokegyenest ellentétes hatást válthat ki. Az első a sejtfal erősítéséhez való hozzájárulás a nem észterezett karboxilcsoportok blokkjainak képződése miatt , amelyek kölcsönhatásba léphetnek a kalciumionokkal, és pektátgélt képeznek. Másodszor, a protonok felszabadulása serkentheti a sejtfal- hidrolázok aktivitását , elősegítve a sejtfal fellazulását.
A pektinek a kétszikű sejtfalak száraz tömegének körülbelül 35%-át teszik ki . A cisz- Golgi-ciszternákban polimerizálódnak, a mediális Golgi-ciszternákban metilésztereződnek, és a transz-Golgi-ciszternákban oldalláncok helyettesítik őket. A pektin biokémiája meglehetősen összetett lehet, de leegyszerűsítve a pektin gerincét 3 típusú polimer alkotja: homogalakturonán (HGA); ramnogalakturonán I (RGI); ramnogalakturonán II (RGII).
A homogalakturonán nagymértékben észteresedik a metil hatására, amikor a sejtfalba kerül, majd ezt követően a pektinészteráz és más pektin enzimek észterezik. A pektinészteráz katalizálja a pektinvegyületekben lévő metilészterezett D-galaktoziduronsav egységek deészterezését, szubsztrátot biztosítva a depolimerizációs enzimek, különösen a savas pektinek és a metanol számára .
A legtöbb tisztított növényi pektinészteráz semleges vagy lúgos izoelektromos pontokkal rendelkezik, és elektrosztatikus kölcsönhatások révén kötődik a sejtfalhoz . A pektinészterázok azonban mutathatják a növényi szövetek oldható frakcióiban található savas izoelektromos pontokat. Egészen a közelmúltig általános vélekedés volt, hogy a növényi pektinészterázok fokozatosan, tömbszerűen távolítják el a metil-észtereket, ami a pektin homogalakturonán doménjeiben a nem észterezett GalA-maradékok hosszú, folyamatos szakaszait eredményezi . Alternatív megoldásként úgy gondolták, hogy a gomba pektinészterázok véletlenszerű aktivitással rendelkeznek, ami az egyes GalA-maradékok deészterezéséhez vezet az enzim/szubsztrát kölcsönhatások hatására. Mostanra kimutatták, hogy egyes növényi pektinészteráz izoformák mindkét mechanizmust mutathatják, és ezeket a mechanizmusokat a pH változása vezérli . A magasabb növények optimális pH-értéke általában pH 7 és pH 8 között van, bár a gombák és baktériumok pektinészteráz pH-ja általában jóval alacsonyabb ennél az értéknél.
A PE-fehérjéket 540-580 aminosavból álló pre-proteinként szintetizálják, szignálszekvenciával és nagy, körülbelül 22 kDa amino-terminális hosszúsággal . Ezt a terminális kiterjesztést végül eltávolítják, ami egy érett, 34-37 kDa-os fehérjét eredményez. A legtöbb PE-nek nincs konszenzus szekvenciája az N-glikozilációhoz az érett fehérjében, bár legalább egy hely jelen van az amino-terminális kiterjesztési régióban.
A pektinészteráz aktivitásának térbeli és időbeli szabályozása a növények fejlődése során az izoformák nagy családján alapul. A közelmúltban az Arabidopsis thaliana genom szisztematikus szekvenálása 66 nyitott leolvasási keret azonosításához vezetett, amelyek pektinészterázként vannak megjelölve, és amelyek többsége nagy pre-proteinként van kódolva. A szignálpeptid előrégió szükséges ahhoz, hogy az enzimet az endoplazmatikus retikulumba célozza, és körülbelül 25 aminosavból áll. Ezek az N-terminális régiók több glikozilációs helyet tartalmaznak, és úgy gondolják, hogy ezek a helyek a célzásban is szerepet játszanak.
Úgy gondolják, hogy a pektinészteráz a nagymértékben metilált pektin apoplazmába szekretálódik, bár ezen a szekréciós útvonalon egy bizonyos ponton az N-terminális propeptid lehasad. Jelenleg a prorégió szerepe nem ismert, bár feltételezték, hogy intramolekuláris chaperonként működhet, megfelelő hajtogatást vagy inaktiváló aktivitást biztosítva a PE sejtfalba történő beépülése előtt.
Az utóbbi időben különös figyelmet fordítottak a pektinészteráz molekuláris vizsgálataira, amelyek több rokon izoforma jellemzéséhez vezettek a magasabb rendű növények különböző fajaiban. E pektinészterázok némelyikéről kimutatták, hogy mindenütt expresszálódnak, míg mások kifejezetten a gyümölcsérés, a pollenszem csírázása vagy a szár megnyúlása során expresszálódnak. Az ilyen adatok azt sugallják, hogy a pektinésztereket egy olyan géncsalád kódolja, amelyek sejttípustól függően eltérően szabályozzák, válaszul specifikus fejlődési vagy környezeti jelekre.
Kétszikű növényekben a pektinészteráz számos izoformáját azonosították, amelyek molekulatömegükben , izoelektromos pontjukban és biokémiai aktivitásukban különböznek egymástól. A pektinészteráz izoformákat egy géncsalád kódolja, amelyek egy része konstitutívan expresszálódik az egész növényben, míg mások bizonyos szövetekben és különböző fejlődési szakaszokban eltérően fejeződnek ki. A pektinészteráz izoformák különböző biokémiai paraméterekben különböznek egymástól, például relatív molekulatömegben, izoelektromos pontban, optimális pH-értékben, szubsztrát affinitásban, ionigényben és elhelyezkedésben.
Pektinészteráz, katalitikus | |
---|---|
Azonosítók | |
Szimbólum | Pektinészteráz_macska |
Pfam | PF01095 |
PROZIT | PDOC00413 |
Elérhető fehérjeszerkezetek | |
Pfam | szerkezetek |
EKT | RCSB EKT ; PDBe ; EKTj |
EKT-összeg | 3D modell |
Az N-terminális pektinészteráz propeptidek méretükben és szekvenciájukban különböznek, és alacsony szintű aminosav azonosságot mutatnak. Másrészt a C-terminális katalitikus régió erősen konzervált, és egy érett enzim. A növényi pektinészterázra megoldott első háromdimenziós szerkezet a sárgarépa gyökeréből ( Daucus carota ) származó izoforma volt, és egy jobb oldali párhuzamos β-hélixből áll, amint az a teljes CE-8 szénhidrát - észteráz családban látható, egy transzmembrán domén. és egy pektinkötő hasadék [3] . Hasonlóképpen számos pektinészteráz szerkezetet sikerült feltárni gombákban és E. coliban , és ezek a legtöbb szerkezeti motívummal megegyeznek a növényekben.
A prokarióta és eukarióta pektinészterázok számos szekvenciahasonlóságot mutatnak. Az Erwinia chrysanthemi pektinészteráz kristályszerkezete a pektinolitikus enzimekhez hasonló béta-hélix szerkezetet mutatott ki, bár eltér az észterázok legtöbb szerkezetétől [4] . A feltételezett katalitikus maradékok ugyanazon a helyen vannak, mint a pektát-liáz aktív helye és szubsztrátkötő hasadéka.
Enzimek | |
---|---|
Tevékenység | |
Szabályozás | |
Osztályozás | |
Típusok |
|
Hidrolázok ( EC 3): észterázok ( EC 3.1) | |||||||||||||||
---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|---|
EK 3.1.1: Karboxil-észterek hidrolázai | |||||||||||||||
EC 3.1.2: Tioészterázok |
| ||||||||||||||
EC 3.1.3: Foszfatázok |
| ||||||||||||||
EC 3.1.4: Foszfodiészterázok |
| ||||||||||||||
EC 3.1.6: Szulfatáz |
| ||||||||||||||
Nukleázok (beleértve a dezoxiribonukleázokat és ribonukleázokat ) |
|