Hisztonok

Az oldal jelenlegi verzióját még nem ellenőrizték tapasztalt közreműködők, és jelentősen eltérhet a 2021. október 3-án felülvizsgált verziótól ; az ellenőrzések 5 szerkesztést igényelnek .

A hisztonok (a görög ἱστός "szövet" szóból) a nukleáris fehérjék  kiterjedt osztálya, amely két fő funkciót lát el: részt vesz a DNS-szálak becsomagolásában a sejtmagban, és olyan nukleáris folyamatok epigenetikai szabályozását, mint a transzkripció , replikáció és javítás .

A kromatinban a hisztonok a száraz tömeg 25-40%-át teszik ki [1] . A magas lizin és arginin tartalma miatt a hisztonok erősen bázikus tulajdonságokat mutatnak. A hisztonok közvetlen kapcsolatban állnak a DNS-sel, és képesek semlegesíteni a DNS-foszfátcsoportok negatív töltését az aminosavak pozitív töltése miatt. Ezekben a fehérjékben az aminosavak sorrendje konzervatív, és gyakorlatilag nem különbözik a különböző taxonokhoz tartozó szervezetekben . A hisztonok jelen vannak az eukarióta sejtek magjában; A baktériumoknak nincs hisztonjuk , de megtalálhatók az Euryarchaea csoport archeáiban [2] .

A hisztonokat 1884-ben Albrecht Kossel német biokémikus fedezte fel [3] .

Hisztontípusok és szerepük

Csak öt különböző típusú hiszton létezik: H1/H5, H2A, H2B, H3, H4.

A H2A, H2B, H3, H4 hisztonok, úgynevezett core hisztonok (az angol  core  "core; core" szóból), egy nukleoszómát alkotnak , amely egy fehérjegömböcske, amely köré egy DNS-szál tekercselődik. Az összes maghiszton központi alegysége azonos másodlagos szerkezettel rendelkezik, kiterjesztett α-helikális doménnel, amelyet mindkét oldalon egy hurkot és egy rövid α-hélixet tartalmazó domének szegélyeznek. Ezt az alegységet "hisztonredőnek" [4] nevezik .

A maghisztonok mind a négy típusa ugyanazzal a „hisztonredővel” rendelkezik, miközben a szekvenciaazonosság közöttük meglehetősen alacsony [5] (egyes becslések szerint nem haladja meg a 25%-ot).

A H1/H5 hiszton, az úgynevezett linker hiszton , a nukleoszóma külső részéhez kötődik  , és rögzíti rajta a DNS-szálat. Az ezt követő DNS-szakaszt linker DNS-nek nevezik (körülbelül 100 bázispár). A H1 hiszton a legnagyobb az összes hiszton közül. Eltér a mag hisztonoktól, és befolyásolja a további kromatin csomagolást [4] .  

A nukleoszómák és a linker hisztonok számos olyan funkcióval rendelkeznek, amelyek meghatározzák a kromatin dinamikáját. Például a H1 hiszton egy DNS-szál fixer a nukleoszómán, és így szabályozza a kromatin hozzáférhetőségét [6] . A maghisztonok viszont megváltoztathatják a belső összetételt, és ezáltal befolyásolhatják a kromatin hozzáférését bizonyos DNS-régiókhoz. Ezenkívül a nukleoszómális fehérjék számos poszttranszlációs módosuláson mennek keresztül a sejt élete során, beleértve az acetilezést, metilezést, foszforilációt és ubiquitilációt, amelyek megváltoztathatják a nukleoszóma tulajdonságait és befolyásolhatják a nukleoszóma különböző fehérjékkel való kölcsönhatását.

Hisztonfehérjék a nukleoszóma szerkezetében

A nukleoszóma körülbelül 147 bázispár (bp) DNS-ből áll, amely egy oktamer (a hélix kb. 1,67 fordulata) köré tekercselt, amely fehérjepárokból, úgynevezett maghisztonokból áll. Átmérője 7 nm. Az egyik nukleoszómát "ölelő" DNS-fragmens hossza változó, átlagosan 200 bp. Ugyanakkor 146 bp közvetlenül kapcsolódik a nukleoszómához, a fennmaradó több tíz pedig két szomszédos nukleoszómát [7] . A H1 linker hiszton kölcsönhatásba lép a DNS linker régiójával anélkül, hogy érintkezésbe kerülne a hiszton oktamerrel.

A nukleoszóma hisztonjai és a DNS közötti kapcsolat meglehetősen erős. Mindegyik nukleoszómában 142 hidrogénkötés jön létre a DNS és az azt alkotó hisztonok között . Ezeknek a kötéseknek csaknem fele a hiszton aminosavak fő lánca és a DNS cukor-foszfát gerincének foszfodiészter csoportjai között található. A DNS és a fehérjék közötti hidrogénkötések mellett a nukleoszómák számos hidrofób kölcsönhatást és sóhidat tartanak össze. Például a lizin és arginin aminosavak pozitív töltései , amelyekkel a hisztonok feldúsulnak, hatékonyan semlegesíthetik a DNS-váz negatív töltését. Ezek a többszörös kölcsönhatások részben megmagyarázzák, hogy szinte bármilyen DNS-szekvencia kapcsolódhat nukleoszómális oktamerhez [8] .

A mag hisztonok szerkezete

A H2A, H2B, H3 és H4 tehénhisztonok kisméretű, 10-15 kDa molekulatömegű fehérjék , amelyek összetétele rendkívül gazdag pozitív töltésű aminosavakban, a lizinben és az argininben [9] . A pozitív töltésű aminosavak főként az amin (N-) és karboxil (C-) (lásd peptidkötés ) terminális részeiben koncentrálódnak a mag hiszton molekulákban, amelyeket farkaknak nevezünk. A körülbelül 15-30 aminosavból álló hisztonfarok nem szerveződik semmilyen kifejezett másodlagos struktúrába. A hisztonfarok, elsősorban az N-farok kulcsszerepet játszik azokban az epigenetikai mechanizmusokban, amelyekben ezek a fehérjék részt vesznek. A hidrofób aminosavak dominálnak a hiszton polipeptid lánc központi, leginkább konzervált régióiban. Ezek a központi régiók vesznek részt a nukleoszómális oktamer kialakulásában, amelyen a DNS kanyarodik [3] . Az összes nukleoszómális hiszton központi régiója jellegzetes másodlagos szerkezettel rendelkezik, kiterjesztett α-helikális doménnel, amelyet mindkét oldalon egy hurkot és egy rövid α-hélixet tartalmazó domének szegélyeznek. Ezt a térszerkezetet hisztonredőnek ( angolul  histon fold domain , HFD) nevezik [10] . Így a nukleoszómális hisztonok központi strukturált háromszálú HFD domént és strukturálatlan N- és C-farkat tartalmaznak.

A H3 és H4, H2A és H2B hisztonok párban ismerik fel egymást. A helikális domének kölcsönhatásba lépnek egymással, kézfogásnak nevezett struktúrákat alkotva, ami heterodimereket eredményez - H3-H4 és H2A-H2B. Az első dimerből viszont egy tetramer (Н3-Н4) 2 képződik . A tetramer (H3-H4) 2 és két dimer, a H2A-H2B alkotják a hisztonoktamert, a nukleoszóma magját [3] . A nukleoszóma ék alakú. Keskeny része (H3-H4) 2 , a széles része pedig két H2A-H2B dimerből áll, amelyek a (H3-H4) 2 tetramer oldalain helyezkednek el és nem lépnek kölcsönhatásba egymással. A nukleoszómális oktamer körül feltekeredett DNS-ből körülbelül 80 bázispár kapcsolódik a (H3-H4) 2 tetramerhez és körülbelül 40 bázispár a H2A-H2B dimerekhez [10] .

A H1/H5 linker hiszton szerkezete

A H1 linker hiszton a nukleoszóma külső oldalához kötődik a (H3-H4) 2 tetramer régiójában , ezáltal rögzíti a DNS-szálat a nukleoszómán. A madarak és hüllők eritrocitáiban az inaktív kromatinban a H1 hiszton helyett egy közeli rokon H5 hiszton található [10] . A H1/H5 hiszton jelentősen eltér a négy mag hisztontól. Molekulatömege meghaladja a 20 kDa-t. Lényegesen több lizint tartalmaz, mint az arginin, és minden pozitív töltésű aminosav a H1 molekula C-terminálisán koncentrálódik. A H1 molekula C-terminálisát rendezetlen szerkezet jellemzi, és körülbelül 100 aminosav hosszúságú. A H1 molekula központi része hidrofób aminosav-maradékokban gazdag, és oldatban gömbölyűt alkot. Az N-terminálisnak nincs rendezett szerkezete és viszonylag rövid [9] .

A hisztonváltozatok és szerepük

Az eukarióta sejtek működését nukleoszóma szinten szabályozó egyik fontos tényező a hisztonok variánsaival való helyettesítése . Kétféle hiszton létezik: kanonikus és hisztonváltozat.

A H4 hiszton kivételével minden hisztonnak különböző változatai vannak. A kanonikus hisztonok (H2A, H2B, H3, H4, H1/H5) általában replikációfüggőek [4] . Különösen a sejtciklus S-fázisában fejeződnek ki. Míg a hisztonváltozatok (H2A.Z, H2A.B, ..., H2B.W, H2B.Z, ..., H3.3, H3.Y, H3.5, ..., H1.0, H1. 10) függetlenek a replikációtól, és a sejt teljes élettartama alatt expresszálódnak. Mind a kanonikus hisztonoknak, mind azok változatainak megvannak a saját jellegzetességei az organizmus típusától függően. Bár léteznek univerzális hisztonok is [11] .

A hisztonváltozatok szerepe a nukleoszómális kromatin feltekeredésének megőrzése, stabilitásának növelése vagy csökkentése, speciális kontextus létrehozása minden egyes kromatin régióban, és ezáltal a transzkripciós, replikációs és javítási folyamatok szabályozása [10] . Mindegyik hisztonváltozatnak van egy jellegzetes szekvenciája és szerkezeti sajátosságai, amelyek megmagyarázzák sajátos funkcióját [4] . Sőt, míg egyes variánsok csak néhány aminosavban térhetnek el egymástól, mások kisebb hasonlóságot mutathatnak. Például a H2B és a H2B.E csak négy vagy öt aminosavban különbözik, míg a H2A.Z két alvariánsa (H2A.Z.1 és H2A.Z.2) a gerinceseknél csak hárommal tér el egymástól. Hasonló helyzet figyelhető meg a H2A.X hisztonváltozat és annak kanonikus formája között. A H2A-tól a funkcionálisan fontos Ser-Gln-(Glu/Asp)-P C-terminális foszforilációs motívumában különbözik, ahol P egy hidrofób csoport. Opció-specifikus szerinfoszforiláció ebben a motívumban a DNS kettős szálú törések kialakulása során fordulhat elő, és fontos lehet a különböző kromatin-átalakítási faktorok toborzása és megtartása szempontjából, hogy elősegítse a kettős szálú törések helyreállítását. Az alacsonyabb azonosságú variánsok párjára példa a H2A.L, amely csak 24%-os szekvenciaazonossággal rendelkezik a kanonikus H2A-val [11] .

Ismeretes, hogy a hisztonváltozatok módosításai gyakran megegyeznek a kanonikus formájukkal. Például a H3.3-ban lévő Lys4 gyakran trimetilezett (H3.3K4me3), míg a Lys18 és Lys23 gyakran acetilezett (H3.3K18ac, illetve H3.3K23ac) [12] .

Hiszton gének

A klasszikus hisztongének több példányban vannak jelen a genomban , és tandemszerűen ismétlődő klaszterekbe állnak össze. A kanonikus hisztongének klaszteres szerveződése minden többsejtű szervezetre jellemző . Emberben e gének legnagyobb klasztere, az úgynevezett HIST1 és 55 génből áll, a 6. kromoszómán található a 6p21-p22 régióban. Két kisebb klaszter található az 1. kromoszómán : az 1q21 sávban a 6 hisztongént tartalmazó HIST2 klaszter, az 1q42 sávban pedig a három génből álló HIST3 klaszter található. A fent leírt három klaszteren kívül, a 12. kromoszómán , a 12p13.1 sávban található az egyetlen, a kanonikus maghisztont kódoló gén, a H4 hisztont kódoló HIST4H4 gén [13] .

A kanonikus hisztongének jellegzetes vonása az intronok hiánya . Ezeknek a géneknek a transzkripciója szigorúan a sejtciklus S-fázisában megy végbe . Ezeknek a géneknek a hírvivő RNS- e nem poliadenilált, az mRNS 3'-nem kódoló része egy szárhurok másodlagos szerkezetté van hajtogatva [14] .

A kanonikus hisztongénekkel ellentétben a variáns hisztongének nem alkotnak klasztereket, szétszórtan helyezkednek el a genomban, gyakran tartalmaznak intronokat, a belőlük átírt RNS poliadenálódik, a transzkripció a teljes sejtciklus alatt megtörténik.

Asztal. humán hiszton gének
szupercsalád Család Alcsalád Gének
Linker hiszton
Hiszton H1
H1 variáns hisztonok (H1F alcsalád) H1F0, H1FNT, H1FOO, H1FX, HILS1
Kanonikus hiszton H1 gének a HIST1 klaszterben (H1H1) HIST1H1A, HIST1H1B, HIST1H1C, HIST1H1D, HIST1H1E, HIST1H1T
Mag hisztonok
Hiszton H2A
H2A (H2AF) hisztonváltozat H2AFB1, H2AFB2, H2AFB3, H2AFJ, H2AFV, H2AFX, H2AFY, H2AFY2, H2AFZ
Kanonikus hiszton H2A gének a HIST1 (H2A1) klaszterben HIST1H2AA, HIST1H2AB, HIST1H2AC, HIST1H2AD, HIST1H2AE, HIST1H2AG, HIST1H2AI, HIST1H2AJ, HIST1H2AK, HIST1H2AL, HIST1H2AM
Kanonikus hiszton H2A gének a HIST2 klaszterben (H2A2) HIST2H2AA3, HIST2H2AC
Hiszton H2B
Változatos hisztonok H2B (H2BF) H2BFM, H2BFS, H2BFWT
Kanonikus hiszton H2B gének a HIST1 (H2B1) klaszterben HIST1H2BA, HIST1H2BB, HIST1H2BC, HIST1H2BD, HIST1H2BE, HIST1H2BF, HIST1H2BG, HIST1H2BH, HIST1H2BI, HIST1H2BJ, HIST1H2BK, HIST1H2BL, HIST1H21BH
Kanonikus hiszton H2A gén a HIST2 klaszterben (H2B2) HIST2H2BE
Hiszton H3
Kanonikus hiszton H3 gének a HIST1 (H3A1) klaszterben HIST1H3A, HIST1H3B, HIST1H3C, HIST1H3D, HIST1H3E, HIST1H3F, HIST1H3G, HIST1H3H, HIST1H3I, HIST1H3J
Kanonikus hiszton H3 gének a HIST2 klaszterben (H3A2) HIST2H3C
Kanonikus hiszton H3 gének a HIST3 klaszterben (H3A3) HIST3H3
Hiszton H4
Kanonikus hiszton H4 gének a HIST1 (H41) klaszterben HIST1H4A, HIST1H4B, HIST1H4C, HIST1H4D, HIST1H4E, HIST1H4F, HIST1H4G, HIST1H4H, HIST1H4I, HIST1H4J, HIST1H4K, HIST1H4L
Kanonikus hiszton H4 gén a klasztereken kívül HIST4H4

Hiszton módosítások

Az oktamerben lévő hisztonoknak van egy 20 aminosavból álló mobil N-terminális fragmense ("farok"), amely kinyúlik a nukleoszómákból, és fontos a kromatin szerkezetének fenntartásához és a génexpresszió szabályozásához. Például ismert, hogy egyes hisztonmódosítások ( foszforiláció és acetilezés ) túlnyomórészt aktív génekkel rendelkező kromatin régiókban lokalizálódnak [15] [16] , míg dezacetilációjuk [17] és a polikombinációs represszor komplex általi metilációja fontos szerepet játszik a pluripotencia fenntartásában. és a differenciálás [18] .

A szabályozás mechanizmusának részletei még nem teljesen tisztázottak [19] [20] [21] .

Hiszton-konzervativizmus

A hisztonok aminosavszekvenciája, azaz elsődleges szerkezete alig változott az evolúció során. Ez jól látható, ha összehasonlítjuk az emlős-, növény- és élesztőhisztonok aminosav-szekvenciáját. Így az emberi és a búza H4 csak néhány aminosavban különbözik. Ezenkívül a fehérjemolekula mérete és polaritása meglehetősen állandó. Ebből arra következtethetünk, hogy a hisztonokat még az állatok, növények és gombák közös elődjének korában (több mint 700 millió évvel ezelőtt) optimalizálták. Noha azóta számtalan pontmutáció történt a hisztongénekben, ezek nyilvánvalóan a mutáns organizmusok kihalásához vezettek.

Lásd még

Jegyzetek

  1. Biológiai enciklopédikus szótár / Ch.ed. M.S. Gilyarov. - M . : Szov. Enciklopédia, 1986. - 831 p.
  2. Nukleinsavak: A-tól Z-ig / B. Appel [et al.]. - M. : Binom: Tudáslaboratórium, 2013. - 413 p. - 700 példány.  - ISBN 978-5-9963-0376-2 .
  3. 1 2 3 Karpov V.L. Mi határozza meg a gén sorsát  // Természet . - Tudomány , 2005. - 3. sz . - S. 34-43 .
  4. ↑ 1 2 3 4 Eli J. Draizen, Alexey K. Shaytan, Leonardo Mariño-Ramírez, Paul B. Talbert, David Landsman. HistonDB 2.0: hiszton adatbázis változatokkal – integrált erőforrás a hisztonok és változataik felfedezéséhez   // Adatbázis . - 2016. - Kt. 2016 . —P.baw014 _ _ — ISSN 1758-0463 . - doi : 10.1093/database/baw014 . Az eredetiből archiválva : 2022. január 19.
  5. Andreas D. Baxevanis, Gina Arents, Evangelos N. Moudrianakis, David Landsman. Különféle DNS-kötő és multimer fehérjék tartalmazzák a hiszton redős motívumot  //  Nucleic Acids Research. - 1995. - 1. évf. 23 , iss. 14 . — P. 2685–2691 . — ISSN 1362-4962 0305-1048, 1362-4962 . doi : 10.1093 / nar/23.14.2685 .
  6. Grigorij A Armeev, Anna K Gribkova, Iunona Pospelova, Galina A Komarova, Alexey K Shaytan. A kromatin összetétele és a szerkezeti dinamika összekapcsolása nukleoszóma szinten  //  Current Opinion in Structural Biology. - 2019-06. — Vol. 56 . — P. 46–55 . - doi : 10.1016/j.sbi.2018.11.006 . Archiválva az eredetiből 2022. június 14-én.
  7. Koryakov D. E. A hiszton módosításai és a kromatin szabályozása // Genetika. - 2006. - T. 42 , 9. sz . - S. 1170-1185 .
  8. A sejt molekuláris biológiája: 3 kötetben / B. Alberts, A. Johnson, D. Lewis et al. - M.-Izhevsk: Research Center "Regular and Chaotic Dynamics", Institute for Computer Research, 2013. - T. I. - S. 325-359. — 808 p. - ISBN 978-5-4344-0112-8 .
  9. 1 2 Razin S. V. Chromatin: a packed genome / S. V. Razin, A. A. Bystritsky. - M. : BINOM: Tudáslaboratórium, 2009. - S. 4-8. — 176 p. — ISBN 978-5-9963-0087-7 .
  10. 1 2 3 4 Koryakov D. E. A kromatin nukleoszomális szervezete // Epigenetika / S. M. Zakian, V.V. Vlaszov, E. V. Dementjeva. - Novoszibirszk: Az Orosz Tudományos Akadémia Szibériai Fiókjának Kiadója, 2012. - P. 7-30. — 592 p. - 300 példány.  — ISBN 978-5-7692-1227-7 .
  11. ↑ 1 2 Alexey K Shaytan, David Landsman, Anna R Panchenko. A hiszton H2A–H2B dimerek szekvenciája és szerkezeti eltérései által biztosított nukleoszóma alkalmazkodóképesség  //  Current Opinion in Structural Biology. — 2015-06. — Vol. 32 . — P. 48–57 . - doi : 10.1016/j.sbi.2015.02.004 . Archiválva az eredetiből 2022. március 8-án.
  12. Paul B. Talbert, Steven Henikoff. Hisztonváltozatok mozgásban: szubsztrátok a kromatin dinamikájához  //  Nature Reviews Molecular Cell Biology. — 2017-02. — Vol. 18 , iss. 2 . — P. 115–126 . — ISSN 1471-0080 1471-0072, 1471-0080 . - doi : 10.1038/nrm.2016.148 . Archiválva az eredetiből 2022. június 3-án.
  13. Marzluff WF, Gongidi P., Woods KR, Jin J., Maltais LJ The human and mouse replikáció-függő hiszton gének  // Genomics  :  Journal. - Academic Press , 2002. - November ( 80. évf. , 5. sz.). - P. 487-498 . — PMID 12408966 . Az eredetiből archiválva: 2016. március 5. Archivált másolat (nem elérhető link) . Letöltve: 2013. július 14. Az eredetiből archiválva : 2016. március 5.. 
  14. Marzluff WF, Wagner EJ, Duronio RJ Kanonikus hiszton mRNS-ek metabolizmusa és szabályozása: élet poli(A) farok nélkül  //  Nat . Fordulat. Közönséges petymeg.  : folyóirat. - 2008. - november ( 9. köt. , 11. sz.). - P. 843-854 . doi : 10.1038 / nrg2438 . — PMID 18927579 .
  15. Zheng Y. et al. A hiszton H1 foszforilációja az I. és II. RNS polimerázok transzkripciójához kapcsolódik  //  The Journal of Cell Biology. - 2010. - 20. évf. 189 , iss. 3 . - 407. o . - doi : 10.1083/jcb.201001148 .
  16. Creyghton MP et al. A hiszton H3K27ac elválasztja az aktív anyagokat a kiegyensúlyozott hatásfokozóktól, és előrejelzi a fejlődési állapotot  (angol)  // Proc Natl Acad Sci US A. - 2010. - Vol. 107 , iss. 50 . - P. 21931-21936 . - doi : 10.1073/pnas.1016071107 .
  17. Guang Hu, Paul A. Wade. NuRD és pluripotencia: Komplex egyensúlyozó törvény  //  Sejt őssejt. - 2012. - Kt. 10 , iss. 5 . - P. 497-503 . - doi : 10.1016/j.stem.2012.04.011 .
  18. Gerasimova A. et al. A betegségekhez hozzájáruló sejttípusok és genetikai variációk előrejelzése a GWAS és az epigenetikai adatok kombinálásával  // PLOS One  . - Tudományos Nyilvános Könyvtár , 2013. - 20. évf. 8 , iss. 1 . — P.e54359 . - doi : 10.1371/journal.pone.0054359 .
  19. Pengelly AR et al. A hisztonmutáns reprodukálja a fenotípust, amelyet a hisztonmódosító faktor elvesztése okoz, Polycomb   // Tudomány . - 2013. - Kt. 339 , iss. 6120 . - 698. o . - doi : 10.1126/tudomány.1231382 .
  20. A hisztonmódosítás szabályozza a fejlődést: A hisztonokon lévő kémiai címkék szabályozzák a génaktivitást . Letöltve: 2013. február 12. Az eredetiből archiválva : 2013. február 11..
  21. Moyra Lawrence, Sylvain Daujat, Robert Schneider. Hogyan szabályozzák a hisztonmódosítások a génexpressziót  //  Trends in Genetics. - Cell Press , 2015. - Vol. 32 , iss. 1 . - P. 42-56 . - doi : 10.1016/j.tig.2015.10.007 .

Linkek