Lon (proteáz)

A Lon (La proteáz) egy szerin proteáz baktériumsejtekben, mitokondriumokban és eukarióta kloroplasztiszokban. Az ATP-függő proteázok fontos csoportjába tartozik, amelybe a proteaszómák , a ClpP , a HslVU és az FtsH is tartoznak. A MEROPS besorolás szerint az S16 családba tartozik [1] .

Szerkezet

A Lon három doménből áll: a) N-terminális, amelynek funkciója nem teljesen ismert, de nyilvánvalóan részt vesz a szubsztrátok felismerésében [2] ; b) ATP-kötés, ATP hidrolízis végrehajtása, polipeptidláncok kibontása és áthelyezése a következőre, c) proteáz domén, ahol a szubsztrát peptid fragmentumokra hasad [3] . E fehérjék közül hat összekapcsolódik, és egy hengeres, hattagú hexamert alkot. A hasításhoz a polipeptidláncnak ki kell bontakoznia a henger belsejében, ahol az aktív centrum el van rejtve, ami megakadályozza, hogy a Lon véletlenszerű sejtfehérjékre lépjen, amelyek nem szubsztrátok. Ezzel szemben a szubsztrát fehérjéket az N-terminális domén ismeri fel, és a fehérje ATP-kötő doménjei transzlokálják az aktív helyre [4] . Bizonyítékok vannak arra, hogy két hattagú gyűrű összekapcsolódva egy nagy hengert alkothat. Sőt, úgy tűnik, hogy ATP-kötő és N-terminális domének kapcsolják össze őket, ami megkülönbözteti a Lont a csoport többi tagjától, amelyben az egyes politagú gyűrűket proteáz domének kapcsolják össze. Feltételezik, hogy a hattagú képes nagy fehérjéket vagy fehérjekomplexeket, a tizenkét tagú pedig kis peptideket vagy kihajtatlan fehérjéket megkötni, ami lehetővé teszi a proteolízis szabályozását a sejtben [5] .

Hatásmechanizmus

A Lon kristályszerkezete azt mutatja, hogy az aktív centrum Ser és Lys katalitikus diádot tartalmaz (ellentétben a legtöbb szerin proteázzal, ahol három aminosav, Ser, Asp és His játszik katalitikus szerepet) [6] . Kísérleti adatok alapján a Lon nem specifikus a szubsztrát hasítására, csak csekély preferenciát mutat a Leu, Phe és Ala -1 pozícióban [7] .

Elosztás

A lon szinte minden baktériumban (ritka kivételekkel), mitokondriumban és állatok és növények kloroplasztiszában megtalálható. Egyes baktériumok (pl . Bacillus subtilis ) a Lon két vagy több formáját tartalmazzák, eltérő funkcionális specifitással [8] , [9] .

Szubsztrátok. funkcionális érték.

Az Escherichii coliban a Lon számos funkciót lát el. A Lon a fő E. coli proteáz , amely felismeri és lebontja a rosszul hajtogatott vagy aggregált fehérjéket [10] [11] . A növekedés késői állófázisában a baktériumsejt elkezdi lebontani a szabad riboszóma fehérjéket , hogy pótolja az aminosavak hiányát. Ezt a funkciót Lon is ellátja [12] . A két legismertebb szubsztrát a SulA és az RcsA. A SulA egy sejtosztódást gátló sejt , amelyet a sejtes DNS-károsodás hatására szintetizálnak. A Lon inaktiválása a sejtekben ultraibolya fénnyel szembeni érzékenységhez vezet – a sejtek a SulA-t szintetizálják, nem pusztul el, a sejtek nem osztódnak, hosszú filamentumokká nőnek, és végül elpusztulnak [13] . Az RcsA aktiválja a kolánsavat szintetizáló enzimek transzkripcióját , egy exopoliszacharidot , amely a baktérium védőkapszuláját alkotja. Ennek megfelelően a Lon hiányának legszembetűnőbb fenotípusos jele a nyálkahártya telepek a Petri-csészéken [14] .

A Lon elpusztítja az UmuD és UmuC fehérjéket, amelyek lehetővé teszik a sejt számára, hogy komplementer DNS-szálat szintetizáljon a sérült szálon (a folyamat során azonban sok hibát követ el). Az UmuD-ben a Lon elpusztítja az inaktív formát, míg az UmuD aktív formáját a ClpXP [15] . A Lon lebontja a zárványtestek mindkét fő szerkezeti fehérjét , az IbpA-t és az IbpB-t [16] ; az oxidatív stresszválasz fehérjék SoxS és MarA transzkripciós aktivátorai [17] ; valamint a toxin-antitoxin rendszerek számos antitoxin fehérjéje , köztük a CcdA, PemI, PasA, RelB és MazE [18] [19] . A B. subtilisnek két különböző Lon fehérje van: LonA és LonB. A LonA részt vesz a sporuláció iniciálásában , míg a LonB csak az újonnan képződött spórában expresszálódik [ 9] [20] ; a Myxococcus xanthusban ennek a szervezetnek a két Lon génje közül az egyik, a LonD részt vesz a spóraképződés szabályozásában és a termőtest kialakításában [21] ; a Proteus mirabilis -ban a Lon szabályozza a mozgékonyságot [22] ; Salmonella enterica , Pseudomonas syringae és Yersinia pestis esetében a III-as típusú szekréciós rendszer komponenseinek kifejeződése, amelyek szükségesek a gazdasejtekkel való interakcióhoz [23] [24] [25] . Az eukarióta mitokondriumokban a Lon a mátrixban található, ahol elpusztítja azokat a fehérjéket , amelyeket rosszul hajtogatnak vagy károsítanak a reaktív oxigénfajok . Ennek legjelentősebb szubsztrátjai az akonitáz, a citokróm-oxidáz egyik alegysége és a StAR fehérje (szteroidogenic acut regulatory protein) [27] [28] [29] .

Specificitás

A Lon a szubsztrátfehérjék N- (UmuD) [30] és C-terminálisán (SulA) [31] egyaránt felismer rövid szekvenciákat . Közös sorozatot azonban nem találtak számukra. A rosszul hajtogatott fehérjékben Lonról beszámoltak arról, hogy rövid hidrofób régiókat ismer fel, amelyek aromás aminosavmaradékokban gazdagok [32] .

rendelet

Az E. coliban a lon gén transzkripciójának egyik promóterét a σ32 szigma faktor ismeri fel, amely a hősokk-fehérjék transzkripciójáért felelős . Ez nyilvánvalóan érthető, mivel Lon felismeri a rosszul hajtogatott fehérjéket, amelyek hősokk hatására drámaian megnövekednek [33] . A Lon a poli-P-hez is kötődik, egy ortofoszfát polimerhez, amelyet E. coli sejtekben szintetizálnak az éhezésre válaszul. Ez megváltoztatja a specifikusságot a szabad riboszómális fehérjék elpusztítására, ami lehetővé teszi, hogy átmenetileg megbirkózzunk az aminosav-éhséggel [12] . A T4 fág szintetizálja a PinA fehérjét, amely specifikusan gátolja a Lont. Ez valószínűleg azt jelzi, hogy a normál állapotban a fág számára fontos fehérjék egy része a Lon szubsztrátja [34] .

Érdekes tények

A rekombináns fehérjék expressziójára széles körben használt BL-21(DE3) törzs fenotípusosan Lon mínusz, mivel a szülő E. coli B törzs a Lont inaktiváló mutációt hordoz. Úgy gondolják, hogy ez a mutáció növeli az aggregálódásra vagy hibás feltekeredésre hajlamos fehérjék hozamát [35] , [36] .

Egyes Lon-kutatók emlősök mitokondriumaiban azt sugallják, hogy e fehérje aktivitásának csökkenése jelentős szerepet játszhat az öregedési folyamatban [37] .

Jegyzetek

  1. Összefoglaló az S16 családhoz Archiválva : 2016. március 4., a Wayback Machine - MEROPS
  2. Ebel et al. J Bacteriol. 1999 Apr;181(7):2236-43. . Letöltve: 2017. október 3. Az eredetiből archiválva : 2016. január 29.
  3. Wickner et al. Tudomány. 1999 Dec 3;286(5446):1888-93. . Letöltve: 2017. október 3. Az eredetiből archiválva : 2016. október 28..
  4. Park et al. Mol Cells. 2006. február 28.;21(1):129-34. . Letöltve: 2017. október 3. Az eredetiből archiválva : 2013. október 12..
  5. Vieux et al. Proc Natl Acad Sci US A. 2013. május 28., 110(22):E2002-8. doi: 10.1073/pnas.1307066110. Epub 2013 május 14. . Letöltve: 2017. október 3. Az eredetiből archiválva : 2017. május 5.
  6. Botos et al. "Az Escherichia coli Lon proteáz katalitikus doménje egyedülálló redőt és Ser-Lys diádot tartalmaz az aktív helyen." J Biol Chem. 2004. február 27.; 279 (9): 8140-8. PMID 14665623
  7. Az S16.001 peptidáz szubsztrátjai: Lon-A peptidáz – MEROPS
  8. Riethdorf et al. J Bacteriol. 176(21):6518-27, 1994 Nov. . Letöltve: 2017. október 3. Az eredetiből archiválva : 2013. október 12..
  9. 1 2 Schmidt et al. J Bacteriol. 176(21): 6528-37, 1994 Nov. . Letöltve: 2017. október 3. Az eredetiből archiválva : 2013. október 12..
  10. Shineberg és Zipser J Bacteriol. 116(3):1469-71 (1973 december). . Letöltve: 2017. október 3. Az eredetiből archiválva : 2013. október 12..
  11. Fredriksson et al. J Bacteriol. 2005 Jun;187(12):4207-13. . Letöltve: 2017. október 3. Az eredetiből archiválva : 2013. október 12..
  12. 1 2 Kuroda et al. Tudomány. 2001. július 27.;293(5530):705-8. . Letöltve: 2017. október 3. Az eredetiből archiválva : 2016. január 30.
  13. Mizusawa és Gottesman. Proc. Natl. Acad. Sci. US A., 1983. jan., 80(2):358-62. . Letöltve: 2017. október 3. Az eredetiből archiválva : 2016. június 3.
  14. Markovitz Proc Natl Acad Sci US A. 1964 Feb;51:239-46. . Letöltve: 2017. október 3. Az eredetiből archiválva : 2013. október 12..
  15. Frank et al. Proc Natl Acad Sci US A. 1996 Sep 17;93(19):10291-6. . Letöltve: 2017. október 3. Az eredetiből archiválva : 2016. május 21.
  16. Bissonnette et al. Mol Microbiol. 2010. márc.;75(6):1539-49. doi: 10.1111/j.1365-2958.2010.07070.x. Epub 2010 február 10 . Letöltve: 2017. október 3. Az eredetiből archiválva : 2017. május 5.
  17. Griffith et al. Mol Microbiol. 2004. márc.;51(6):1801-16. . Letöltve: 2017. október 3. Az eredetiből archiválva : 2013. október 12..
  18. Christensen et al. A RelE, a transzláció globális gátlója, a táplálkozási stressz során aktiválódik. Proc Natl Acad Sci USA . 2001. december 4.; 98 (25):14328-33. PMID 11717402
  19. Christensen et al. J "Toxin-antitoxin lókuszok, mint stressz-válasz-elemek: a ChpAK/MazF és a ChpBK hasítják a transzlált RNS-eket, és a tmRNS ellensúlyozza őket". Mol Biol. 2003. szeptember 26.; 332 (4), 809-19. PMID 12972253
  20. Serrano et al. J Bacteriol. 2001. május;183(10):2995-3003. . Letöltve: 2017. október 3. Az eredetiből archiválva : 2013. október 12..
  21. Kroos és Kaiser. "Sok fejlődésileg szabályozott gén expressziója a Myxococcusban a sejtkölcsönhatások sorozatától függ." Gene Dev. 1987. október; 1 (8):840-54. PMID 2828174
  22. Claret és Hughes. J Bacteriol. 2000 febr., 182(3):833-6. . Letöltve: 2017. október 3. Az eredetiből archiválva : 2013. október 12..
  23. Takaya et al. Mol Microbiol. 2005. február 55(3):839-52. . Letöltve: 2017. október 3. Az eredetiből archiválva : 2016. május 20.
  24. Bretz et al. "A hosszú proteáz a Pseudomonas syringae III-as típusú fehérjeszekréciójának negatív szabályozójaként működik" Mol Microbiol. 2002 júl. 45 (2), 397-409. PMID 12123452
  25. Jackson et al. Mol Microbiol. 2004. december;54(5):1364-78. . Letöltve: 2017. október 3. Az eredetiből archiválva : 2013. október 12..
  26. Granot et al. Mol Endokrinol. 2007 Sep;21(9):2164-77. Epub 2007 június 19 . Letöltve: 2017. október 3. Az eredetiből archiválva : 2013. október 12..
  27. Fukuda et al. sejt. 2007 Apr 6;129(1):111-22. . Letöltve: 2017. október 3. Az eredetiből archiválva : 2018. augusztus 4..
  28. Botha és Davies. Nat Cell Biol. 2002 Sep;4(9):674-80. . Letöltve: 2017. október 3. Az eredetiből archiválva : 2016. július 28..
  29. Gonzalez et al. Gene Dev. 1998. december 15., 12(24):3889-99. . Letöltve: 2017. október 3. Az eredetiből archiválva : 2013. október 12..
  30. Higashitani et al. Mol Gen Genet. 1997 Apr 28;254(4):351-7. . Letöltve: 2017. október 3. Az eredetiből archiválva : 2013. október 12..
  31. Gur és Sauer Genes Dev. 2008. augusztus 15.;22(16):2267-77. doi: 10.1101/gad.1670908. . Letöltve: 2017. október 3. Az eredetiből archiválva : 2020. április 7..
  32. Gayda et al. J Bacteriol. 162(1): 271-5, 1985 ápr. . Letöltve: 2017. október 3. Az eredetiből archiválva : 2015. április 10.
  33. Hillard et al. J Biol Chem. 1998. január 2., 273(1):518-23. . Letöltve: 2017. október 3. Az eredetiből archiválva : 2013. október 12..
  34. saiSree et al. J Bacteriol. 2001. december;183(23):6943-6. . Letöltve: 2017. október 3. Az eredetiből archiválva : 2013. október 12..
  35. E. coli genotípusok, BL-21 (DE3) . Hozzáférés dátuma: 2013. október 6. Az eredetiből archiválva : 2013. október 12.
  36. Ngo és Davies Ann NY Acad Sci. 2007. nov., 1119:78-87. . Letöltve: 2017. október 3. Az eredetiből archiválva : 2013. október 12..