Flagellum

A flagellum ( eng.  Flagellum ) számos prokarióta ( baktérium és archaea ) és eukarióta sejtben jelenlévő felületi struktúra , amely folyékony közegben vagy szilárd közegek felszínén való mozgását szolgálja .

A prokarióták és eukarióták flagellái alapvetően különböznek mind szerkezetükben, mind a mozgáshoz szükséges energiaforrásban , mind a mozgás mechanizmusában. A zászlók jelen lehetnek egyenként vagy tömegesen a sejteken, és számos protistákban , zoospórákban és ivarsejtekben is megtalálhatók . Az eukarióta flagellum egy membránnal körülvett sejtkinövés, benne a citoszkeleton elemeivel , amely az ATP hidrolízis energiája miatt ver. A bakteriális flagellum az archeális flagellumhoz hasonlóan a sejtmembránba ágyazódik, és a protonok vagy nátriumionok transzmembrán gradiensének energiája miatt forog .

Az úszás mellett a flagellák fontos szerepet játszanak a baktériumok életében zajló egyéb folyamatokban is. Részt vesznek a biofilmek kialakításában , kapcsolatot biztosítanak a sejtek és a szubsztrát között, elősegítik a gazdaszervezet szimbiotikus baktériumok általi megtelepedését , a virulenciafaktorok egyikeként szolgálnak , és kiváltják a gazdaszervezet immunválaszát .

Eukarióta flagella

Az eukarióta flagellum vékony kinövés a sejtfelszínen, sejtmembránnal borítva, és egy axonémet tartalmaz  , egy összetett szerkezeti elemet, amely mikrotubulusok rendszere . A flagellákat számos szervezetben, zoospórákban és számos protisták sejtjében látják el ivarsejtekkel. A flagellum hullámzó vagy tölcsér alakú mozgásokat végez, másodpercenként 10-40 fordulatot tesz meg . Az eukarióta flagellum mozgásához szükséges energiát az ATP hidrolíziséből nyerik . A flagellum külső, extracelluláris részét undulipodiának nevezik [ 1] .

Az undulipodium általában egyenletes vastagságú a teljes hosszában, amely 200 és 250 nm között van . Szinte minden szabadon élő protistáknál az undulipodia medvepikkelyeket vagy masztigonémákat (a flagellum felszínéről kinyúló fonalas struktúrákat) visel [2] . Az undulipodium szerkezeti alapját egy axoném képviseli, amely 9 pár perifériás mikrotubulusból (dublettből) és két központi mikrotubulusból áll. Ez a képlet (9 × 2 + 2) minden eukarióta esetében jellemző, bár kivételek ismertek (leggyakrabban a központi mikrotubuluspár csökken, de néha további mikrotubulusok jelennek meg az axonémában). Az axoném összetevői összetettek és több mint 250 fehérjéből állnak . Két centrális mikrotubulus 25 nm átmérőjű , és egymástól 30 nm távolságra helyezkednek el [1] , vékony anyagból készült közös hüvelybe vannak öltözve. Radiális küllők segítségével a hüvely a mikrotubulusok perifériás dublettjeivel van összekötve. Mindegyik dublettet A és B mikrotubulusok alkotják, az A-mikrotubulusokhoz sugárirányú küllők kapcsolódnak. Az A-mikrotubulusok dynein fogantyúkat és nexinhidakat is . A dynein fogantyúk a szomszédos dublett felé irányulnak, és az axoném meghajlását okozzák, biztosítva a dublettek egymáshoz képesti elcsúszását. Nexin hidak szükségesek a szomszédos dublettek erős szalagjához az axoném átmeneti zónájában, amely nem hajlik. Néha az eukarióták flagellái további szerkezeti elemeket hordoznak, például néhány protistákban ( dinoflagellaták , euglenoidok és mások) található paraxiális szálat. A paraxiális zsinór mikrofilamentumokból áll, és az axonémán fut végig [3] .

A flagellum sejtből való kilépési szintjén található az úgynevezett axonemális átmeneti zóna. Az axoném a kinetoszómához vagy alaptesthez kapcsolódik, amely a sejtmembrán alatt található. A kinetoszóma egy üreges henger, amelynek fala 9 mikrotubulus hármasból áll, amelyeket általában fibrilláris hidak kötnek össze. A triplett az axonémiás A- és B-mikrotubulusok mellett egy további C-mikrotubulust is tartalmaz a B-mikrotubulus mellett. A kinetoszóma proximális részének közepén egy küllős tengely található, amely a centriolákban is megtalálható [4] .

Az úgynevezett gyökerek , fibrilláris vagy mikrotubulus szerkezetek közvetlenül távoznak a kinetoszómákból . Néha rövid fibrilláris kötegekkel kapcsolódnak a kinetoszómákhoz, vagy a kinetoszómát körülvevő amorf anyagrétegben kezdődnek. Mindkét típus gyökerei a flagellum sejttestben való rögzítésére szolgálnak [5] .

Az eukarióta sejtek általában 1-8 flagellát hordoznak, bár a protisták körében számos poliflagellar forma ismert. A zászlós protisták négy fő csoportra oszthatók: az izokontok azonos flagellákat viselnek, azonos verésmintával; az anisokontoknak különböző hosszúságú zászlócskáik vannak, de formájuk és verésmódjuk is azonos; a heterokontoknak két flagellája van , külsejükben és helyükben eltérőek, különböző verési módokkal; végül a stephanocont formák a sejt elülső végén 30-40 flagellából állnak [6] .

Bakteriális flagella

Az ismert baktériumfajok 80%-ának van flagellája [7] . A flagellák száma és elrendezése fajonként eltérő. Egyes baktériumoknak csak egy flagellumja van (monotrichous), másoknak két flagellája a sejt két ellentétes végén található (amphitrichous), a harmadikban a sejt pólusain flagellakötegek (lophotrichous) találhatók, a negyedik flagella pedig a teljes felületet lefedi. a sejt (peritrichus). A spirochetákban a flagellum a két membrán közötti periplazmatikus térben található . A spirocheta sejtek jellegzetes csavart alakkal rendelkeznek, amely mozgással változik [8] .

A baktériumok flagellumának szerkezete alapvetően eltér az eukarióták flagellumának szerkezetétől. Ha az eukarióta flagellum egy membránnal körülvett sejtkinövés, benne a citoszkeleton elemeivel , amely az ATP hidrolízis energiája miatt mozog, akkor a bakteriális flagellum (mint az archaeális flagellum) beágyazódik a sejtmembránba és forog a sejtmembránba. a protonok vagy nátriumionok transzmembrán gradiensének energiája . Ezenkívül az eukarióta flagellákkal ellentétben, amelyek fő mozgása a verés, a bakteriális flagellák forognak [9] . A baktériumok és az archaea zászlói két független részből állnak - egy rotorból és egy állórészből [10] .

A flagellum felváltva forog az óramutató járásával megegyezően és azzal ellentétesen. A forgási frekvencia egy adott cella esetében állandó, és 250 és 1700 Hz között mozog ( azaz 1,5⋅10 4 és 10 5 ford./perc között ) [10] .

A flagellum szerkezetét a legjobban az E. coli Escherichia coli és a Salmonella enterica Typhimurium szerotípus tanulmányozzák . A baktériumok mozgásáért felelős gének három csoportra oszthatók:

A bakteriális flagellum fő szerkezeti összetevői a következők:

A flagellum munkarésze izzószál vagy cérna . Az izzószál egy spirál alakú henger, amelynek belső csatornája körülbelül 3 nm átmérőjű. A filamentum a flagellin fehérje (FliC) körülbelül 20 000 azonos alegységéből áll. Egyes baktériumok, például a Helicobacter pylori , Caulobacter crescentus , Sinorhizobium meliloti és Campylobacter coli kétféle flagellin alegységet tartalmaznak a filamentumban. Számos baktériumban a flagellin alegységei glikoziláltak . A filamentum összetételében a flagellin alegységek spirálisan helyezkednek el, csavarmenetenként 11 alegység, így 11 párhuzamos protofilamentumot alkotnak, amelyek enyhe szöget zárnak be a filamentum tengelyével. A filamentum alakját a benne lévő flagellinek aminosavsorrendje , az ionerősség és az oldat pH -értéke határozza meg, amelyben a sejt mozog. Amikor a motor az óramutató járásával ellentétes irányban forog, az izzószál balkezes spirál alakot ölt, az óramutató járásával megegyező irányba forogva pedig jobbkezes spirál alakot ölt. A filamentum disztális végén egy sapka (sapka) található, amely korong alakú, és a FliD fehérje öt alegységéből áll. A filamentum csatornán és a sapkában lévő öt „ablakon” keresztül flagellin alegységek jönnek ki, és a kupak biztosítja azok összehajtását [13] .

A filamentum egy horogon keresztül kapcsolódik az alaptesthez , amelyet az FlgE alegységek, az FlgKL járulékos fehérjék és az FlgD fedőfehérje alkotnak, amelyet a horog összeszerelésekor eltávolítanak. A horog rugalmas kötés szerepét tölti be, aminek köszönhetően a merev menet a cella felületéhez képest változtathatja a helyzetét [14] .

A bazális test a sejtfalba van ágyazva, és a Gram-negatív baktériumokban a következő részekből áll:

Mivel a flagellum alegységek bioszintézise sok sejtforrást igényel, ezt egy speciális kaszkád szabályozza, amely az E. coliban és a Salmonella enterica Typhimurium szerovariánsban három génosztályt foglal magában. A flagellum alegység export apparátus FlhAB, FliOPQR és FliHIJ alegységekből áll, kinyúlik a citoplazmába, áthalad a rotor központi nyílásán, és részben bemerül az MS gyűrűbe [16] .

A baktériumsejt úszásának jellege a flagellák számától és elhelyezkedésétől függ. A monotrichoknál például a Pseudomonas aeruginosa , az óramutató járásával megegyező irányban forgó flagellum előrenyomja a sejtet, és vele szemben húzza magával. Egyes baktériumokban a flagellum csak az óramutató járásával megegyező irányban forog. A sok flagellával (polytrichous) rendelkező baktériumokban úszáskor a flagellák az óramutató járásával ellentétes irányban forgó flagellává fonódnak. Az óramutató járásával megegyező irányba forgatva a köteg letekeredik, és az egyes flagellák független forgása miatt a sejt „zuhanni” kezd, és előreláthatatlanul megváltoztatja a mozgás irányát [17] .

Az úszás mellett a flagellák fontos szerepet játszanak a baktériumok életében zajló egyéb folyamatokban is. Részt vesznek a biofilmek kialakításában , biztosítják a sejtek érintkezését a szubsztráttal, elősegítik a gazdaszervezet szimbiotikus baktériumok általi megtelepedését , a patogén baktériumok esetében pedig a flagellák az egyik virulenciafaktorként szolgálnak , mivel elősegítik a gazdaszervezetbe való bejutást. test, mozgás viszkózus intercelluláris közegben, behatolás az endothel . A bakteriális flagellák erősen immunogének és kiváltják a gazdaszervezet immunválaszát , ezért a flagellum komponenseket passzív immunizáláshoz használják [18] .

A Vibrio nemzetségbe tartozó egyes baktériumok (különösen a Vibrio parahaemolyticus [19] ) és néhány proteobaktérium , mint például az Aeromonas , két különböző flagelláris rendszerrel rendelkeznek, amelyek fehérjekomponenseit különböző génkészletek és különböző ionos gradiensek kódolják. forgatásra használják . Az első flagelláris rendszerhez tartozó poláris flagellák állandóan jelen vannak és mobilitást biztosítanak a folyadékáramlásban, míg a második flagelláris rendszerhez tartozó laterális flagellák csak akkor fejeződnek ki , ha a környező folyadék ellenállása olyan nagy, hogy a poláris flagellák nem tudnak elfordulni. Ennek köszönhetően a baktériumok különféle felületeken és viszkózus folyadékokban siklahatnak [20] [21] [22] [23] [24] [25] .

Archaeal flagella

Az archaea flagellum (archellum) más élőlényekhez hasonlóan elsősorban folyékony közegben való mozgásra szolgál. Szerkezetileg az archellum hasonló a IV-es típusú fűrészekhez [27] . A legtöbb gének, amelyek fehérjetermékei az archellumot alkotják, egyetlen fla operont alkotnak. Ez az operon 7-13 gént tartalmaz, amelyek termékei az archellum összeállításában és működésében vesznek részt [28] . Az archellum szerkezeti komponenseit archellineknek nevezzük, ezeket a fehérjéket a flaA és flaB gének kódolják ; a motorkomponenseket a flaI , flaJ és flaH gének kódolják . Ez az operon kódolja a FlaG, FlaF és FlaX járulékos fehérjéket, valamint a FlaC, FlaD és FlaE jelátviteli fehérjéket is. Különböző régészeti fajok genetikai elemzése kimutatta, hogy a felsorolt ​​fehérjék mindegyike szükséges az archellum összeállításához [29] [30] [31] [32] [33] . Az euryarchaeoták szinte teljes flagén készlettel rendelkeznek , míg a Crenarchaeota típus képviselőiből hiányozhat egy vagy kettő. Az archelinek éréséhez szükséges a peptidáz prepilin (euryarcheotákban PibD, crenarcheotákban FlaK néven ismert), de nem része a fla-operonnak [34] .

Bár az archellum sok tekintetben jelentősen eltér a bakteriális flagellumtól, fő funkciója ugyanaz – a sejt szállítása folyékony közegben [33] [35] [36] vagy nedves felületen [37] [38] . A bakteriális flagellumhoz [39] [40] hasonlóan az archellum is részt vesz a sejt szubsztráthoz való kötődésében és a sejtközi kommunikációban [41] [42] , azonban a bakteriális flagellákkal ellentétben nem vesz részt a biofilmek képződésében [43] .

Jegyzetek

  1. 1 2 Chencov Yu. S. Bevezetés a sejtbiológiába: Tankönyv egyetemeknek. - 4. kiadás, átdolgozva. és további .. - ICC "Akademkniga", 2004. - S. 418. - 495 p. - ISBN 5-94628-105-4 .
  2. Karpov, 2001 , p. 148-149.
  3. Karpov, 2001 , p. 157-159.
  4. Karpov, 2001 , p. 159-160.
  5. Karpov, 2001 , p. 162-163.
  6. Karpov, 2001 , p. 146-147.
  7. Pinevich, 2006 , p. 325.
  8. Bardy SL , Ng SY , Jarrell KF Prokarióta motilitási struktúrák.  (angol)  // Mikrobiológia (Reading, Anglia). - 2003. - február ( 149. köt. , 2. sz.). - P. 295-304 . - doi : 10.1099/mic.0.25948-0 . — PMID 12624192 .
  9. Streif S. , Staudinger WF , Marwan W. , Oesterhelt D. A Halobacterium salinarum archeonban a zászlós rotáció az ATP-től függ.  (angol)  // Journal Of Molecular Biology. - 2008. - december 5. ( 384. évf . , 1. sz.). - P. 1-8 . - doi : 10.1016/j.jmb.2008.08.057 . — PMID 18786541 .
  10. 1 2 Pinevich, 2006 , p. 326.
  11. Pinevich, 2006 , p. 326-327.
  12. Pinevich, 2006 , p. 327.
  13. Pinevich, 2006 , p. 328-329.
  14. Pinevich, 2006 , p. 329.
  15. Pinevich, 2006 , p. 329-330.
  16. Pinevich, 2006 , p. 330-331.
  17. Pinevich, 2006 , p. 332.
  18. Pinevich, 2006 , p. 325-326, 333.
  19. Kim YK , McCarter LL A Vibrio parahaemolyticus poláris flagelláris génrendszerének elemzése.  (angol)  // Journal Of Bacteriology. - 2000. - július ( 182. évf. , 13. sz.). - P. 3693-3704 . — PMID 10850984 .
  20. Atsumi T. , Maekawa Y. , Yamada T. , Kawagishi I. , Imae Y. , Homma M. A viszkozitás hatása az úszásra a Vibrio alginolyticus laterális és poláris flagellái által.  (angol)  // Journal Of Bacteriology. - 1996. - augusztus ( 178. évf. , 16. sz.). - P. 5024-5026 . — PMID 8759871 .
  21. A McCarter LL Dual flagelláris rendszerek különböző körülmények között teszik lehetővé a mozgékonyságot.  (angol)  // Journal Of Molecular Microbiology And Biotechnology. - 2004. - 20. évf. 7 , sz. 1-2 . - P. 18-29 . - doi : 10.1159/000077866 . — PMID 15170400 .
  22. Merino S. , Shaw JG , Tomás JM . Bakteriális laterális flagella: indukálható flagella rendszer.  (angol)  // FEMS Microbiology Letters. - 2006. - október ( 263. évf. , 2. sz.). - 127-135 . o . - doi : 10.1111/j.1574-6968.2006.00403.x . — PMID 16978346 .
  23. Belas R. , Simon M. , Silverman M. Laterális flagella géntranszkripció szabályozása Vibrio parahaemolyticusban.  (angol)  // Journal Of Bacteriology. - 1986. - július ( 167. évf. , 1. sz.). - P. 210-218 . — PMID 3013835 .
  24. Canals R. , Altarriba M. , Vilches S. , Horsburgh G. , Shaw JG , Tomás JM , Merino S. Az Aeromonas hydrophila AH-3 laterális flagelláris génrendszerének elemzése.  (angol)  // Journal Of Bacteriology. - 2006. - február ( 188. évf. , 3. sz.). - P. 852-862 . - doi : 10.1128/JB.188.3.852-862.2006 . — PMID 16428388 .
  25. Canals R. , Ramirez S. , Vilches S. , Horsburgh G. , Shaw JG , Tomás JM , Merino S. Polar flagellum biogenesis in Aeromonas hydrophila.  (angol)  // Journal Of Bacteriology. - 2006. - január ( 188. évf. , 2. sz.). - P. 542-555 . - doi : 10.1128/JB.188.2.542-555.2006 . — PMID 16385045 .
  26. Albers SV , Jarrell KF The Archaellum: Frissítés az egyedülálló régészeti mozgékonyság szerkezetéről.  (angol)  // Trends In Microbiology. - 2018. - április ( 26. évf. , 4. sz.). - P. 351-362 . - doi : 10.1016/j.tim.2018.01.004 . — PMID 29452953 .
  27. Albers Sonja-Verena , Jarrell Ken F. The archaellum: how archaea swim  //  Frontiers in Microbiology. - 2015. - január 27. ( 6. köt. ). — ISSN 1664-302X . - doi : 10.3389/fmicb.2015.00023 .
  28. Ghosh A. , Albers SV Az archeális flagellum összeállítása és működése.  (angol)  // Biochemical Society Transactions. - 2011. - január ( 39. évf. , 1. sz.). - 64-69 . o . - doi : 10.1042/BST0390064 . — PMID 21265748 .
  29. Patenge N. , Berendes A. , Engelhardt H. , Schuster SC , Oesterhelt D. A fla gén klaszter részt vesz a Halobacterium salinarum flagellák biogenezisében.  (angol)  // Molekuláris mikrobiológia. - 2001. - augusztus ( 41. évf. , 3. sz.). - P. 653-663 . — PMID 11532133 .
  30. Thomas NA , Bardy SL , Jarrell KF Az ősi flagellum: egy másfajta prokarióta motilitás szerkezet.  (angol)  // FEMS Microbiology Reviews. - 2001. - április ( 25. évf. , 2. sz.). - 147-174 . o . - doi : 10.1111/j.1574-6976.2001.tb00575.x . — PMID 11250034 .
  31. Thomas NA , Mueller S. , Klein A. , Jarrell KF A Methanococcus voltae archeon flaI és flaJ mutánsai hiányosak a flagellum-összeállításban.  (angol)  // Molekuláris mikrobiológia. - 2002. - november ( 46. évf. , 3. sz.). - P. 879-887 . — PMID 12410843 .
  32. Chaban B. , Ng SY , Kanbe M. , Saltzman I. , Nimmo G. , Aizawa S. , Jarrell KF A flagella operonban lévő fla gének szisztematikus deléciós elemzése számos olyan gént azonosít, amelyek elengedhetetlenek a flagellák megfelelő összeállításához és működéséhez archeon, Methanococcus maripaludis.  (angol)  // Molekuláris mikrobiológia. - 2007. - november ( 66. évf. , 3. sz.). - P. 596-609 . - doi : 10.1111/j.1365-2958.2007.05913.x . — PMID 17887963 .
  33. 1 2 Lassak K. , Neiner T. , Ghosh A. , Klingl A. , Wirth R. , Albers S. V. Molecular analysis of the crenarchaeal flagellum.  (angol)  // Molekuláris mikrobiológia. - 2012. - január ( 83. évf. , 1. sz.). - 110-124 . o . - doi : 10.1111/j.1365-2958.2011.07916.x . — PMID 22081969 .
  34. Bardy SL , Jarrell KF A preflagellinek aszparaginsav szignálpeptidázzal történő hasítása nélkülözhetetlen a Methanococcus voltae archeon flagellációjához.  (angol)  // Molekuláris mikrobiológia. - 2003. - november ( 50. évf. , 4. sz.). - P. 1339-1347 . — PMID 14622420 .
  35. Alam M. , Claviez M. , Oesterhelt D. , Kessel M. Flagella and motility behavior of squarebacteria.  (angol)  // The EMBO Journal. - 1984. - december 1. ( 3. köt . 12. sz .). - P. 2899-2903 . — PMID 6526006 .
  36. Herzog B. , Wirth R. Az Archaea kiválasztott fajainak úszási viselkedése.  (angol)  // Alkalmazott és környezeti mikrobiológia. - 2012. - március ( 78. évf. , 6. sz.). - P. 1670-1674 . - doi : 10.1128/AEM.06723-11 . — PMID 22247169 .
  37. Szabó Z. , Sani M. , Groeneveld M. , Zolghadr B. , Schelert J. , Albers SV , Blum P. , Boekema EJ , Driessen AJ Flagellar motility and structure in the hyperthermoacidophilic archaeon Sulfolobus solfataricus.  (angol)  // Journal Of Bacteriology. - 2007. - június ( 189. évf. , 11. sz.). - P. 4305-4309 . - doi : 10.1128/JB.00042-07 . — PMID 17416662 .
  38. Jarrell KF , Bayley DP , Florian V. , Klein A. Inszerciós mutációk izolálása és jellemzése flagellin génekben a Methanococcus voltae archaeonban.  (angol)  // Molekuláris mikrobiológia. - 1996. - május ( 20. évf. , 3. sz.). - P. 657-666 . — PMID 8736544 .
  39. Henrichsen J. Bakteriális felszíni transzlokáció: felmérés és osztályozás.  (angol)  // Bakteriológiai áttekintések. - 1972. - December ( 36. évf. , 4. sz.). - P. 478-503 . — PMID 4631369 .
  40. Jarrell KF , McBride MJ A prokarióták meglepően változatos mozgási módjai.  (angol)  // Nature Reviews. mikrobiológia. - 2008. - június ( 6. köt. , 6. sz. ). - P. 466-476 . - doi : 10.1038/nrmicro1900 . — PMID 18461074 .
  41. Näther DJ , Rachel R. , Wanner G. , Wirth R. A Pyrococcus furiosus flagella: többfunkciós organellumok, úszásra, különféle felületekhez való tapadásra és sejt-sejt érintkezésre készültek.  (angol)  // Journal Of Bacteriology. - 2006. - október ( 188. évf. , 19. sz.). - P. 6915-6923 . - doi : 10.1128/JB.00527-06 . — PMID 16980494 .
  42. Zolghadr B. , Klingl A. , Koerdt A. , Driessen AJ , Rachel R. , Albers SV Appendige-mediált felületi tapadás a Sulfolobus solfataricus.  (angol)  // Journal Of Bacteriology. - 2010. - január ( 192. évf. , 1. sz.). - 104-110 . o . - doi : 10.1128/JB.01061-09 . — PMID 19854908 .
  43. Koerdt A. , Gödeke J. , Berger J. , Thormann KM , Albers SV Crenarchaeal biofilm formation at extreme conditions.  (angol)  // PloS One. - 2010. - november 24. ( 5. köt. , 11. sz.). - P. e14104-14104 . - doi : 10.1371/journal.pone.0014104 . — PMID 21124788 .

Irodalom