Streptavidin

 

A Streptavidin / ˌstrɛpˈtævɪdɪn / egy 66,0 kDa ( tetramer ) fehérje , amelyet a Streptomyces avidinii baktériumból tisztítanak . _ _ _ _ A sztreptavidin homotetramerek rendkívül nagy affinitással rendelkeznek a biotinhoz (más néven B7-vitamin vagy H-vitamin). ≈10 -14 mol/l nagyságrendű disszociációs állandóval (K d ) [1]a biotin sztreptavidinhez való kötődése a természetben ismert egyik legerősebb nem kovalens kölcsönhatás. A sztreptavidint széles körben használják a molekuláris biológiában és a bionanotechnológiában, mivel a sztreptavidin-biotin komplex ellenáll a szerves oldószereknek, denaturálószereknek (pl. guanidinium-klorid ), detergenseknek (például SDS , Triton X-100 ), proteolitikus enzimeknek, valamint szélsőséges hőmérsékleti és pH-értékeknek.

Szerkezet

A biotinhoz kötött sztreptavidin kristályszerkezetét két csoport írta le 1989-ben. A szerkezetet Hendrickson és munkatársai többhullámú anomális diffrakcióval oldották meg. [2] a Columbia Egyetemen , és többszörös izomorf szubsztitúciót alkalmazva Weber et al. [3] az EI DuPont Központi Kutatás és Fejlesztés területén. 2017 szeptemberéig 171 szerkezetet helyeztek el a Protein Data Bankban . A teljes listáért lásd ezt a linket . A teljes hosszúságú 159-es aminosavból álló fehérje N- és C-terminálisát rövidebb "mag" sztreptavidinné alakítják, amely jellemzően a 13-139. aminosavakból áll; az N- és C-terminális eltávolítása szükséges a biotinnal szembeni legmagasabb kötési affinitás eléréséhez. A sztreptavidin monomer másodlagos szerkezete nyolc antiparallel β-szálból áll, amelyek összehajtogatva egy antiparallel β-hordó harmadlagos szerkezetet alkotnak. A biotinkötő hely minden β-hordó egyik végén található. Négy azonos sztreptavidin monomer (azaz négy azonos β-szár) kötődik a sztreptavidin tetramer kvaterner szerkezetéhez. A biotinkötő hely minden szárban a szár belsejéből származó maradékokból, valamint a szomszédos alegységből származó konzervált Trp120-ból áll. Így minden alegység hozzájárul a szomszédos alegység kötőhelyéhez, ezért a tetramer a funkcionális dimerek dimerjének is tekinthető.

A nagy affinitás eredete

A sztreptavidin-biotin komplex számos kristályszerkezete rávilágított ennek a figyelemre méltó affinitásnak az eredetére. Először is, a kötőzseb és a biotin között nagy alaki komplementaritás van. Másodszor, a kötőhelyen a biotinnal hidrogénkötések kiterjedt hálózata képződik. Nyolc hidrogénkötés van közvetlenül a kötőhelyen (a hidrogénkötések úgynevezett "első héja") lévő maradékokhoz, beleértve az Asn23, Tyr43, Ser27, Ser45, Asn49, Ser88, Thr90 és Asp128 maradékokat. Van egy "második héj" is a hidrogénkötéseknek, beleértve azokat a maradékokat is, amelyek kölcsönhatásba lépnek az első héjmaradékokkal. A sztreptavidin biotinnal szembeni affinitása azonban meghaladja azt a mértéket, amely önmagában a hidrogénkötések kölcsönhatásaiból várható lenne, ami egy másik mechanizmusra utal, amely hozzájárul a magas affinitáshoz [4] . A biotinkötő zseb hidrofób , és számos van der Waals által közvetített érintkezés és hidrofób kölcsönhatás van a biotinnal, amikor a zsebben van, amiről úgy gondolják, hogy megmagyarázza a nagy affinitást. Különösen a zseb tartósított triptofánmaradványokkal van bélelve. Végül a biotinkötést a 3-as és 4-es β-szálakat (L3/4) összekötő flexibilis hurok stabilizálása kíséri, amely a megkötött biotin fölé záródik, „fedélként” működik a kötőzseb felett, és lehetővé teszi a biotin rendkívül lassú felszabadulását. biotin. disszociációs ráta.

A sztreptavidin mutációjára tett kísérletek többsége a biotinkötési affinitás csökkenését eredményezi, ami egy ilyen optimalizált rendszerben várható. Azonban egy újonnan létrehozott streptavidin mutánsról, a traptavidinről kiderült, hogy a biotin több mint tízszer lassabban disszociál, emellett nagyobb termikus és mechanikai stabilitása is van [5] . A disszociációs ráta csökkenése az asszociációs ráta kétszeres csökkenésével járt.

A biotinkötési affinitás megszakítható a sztreptavidin kémiai jelölésével, például amino-reaktív fluoroforokkal ; A flavidin egy lizin oldalláncok nélküli streptavidin mutáns, amely megőrzi jó biotinkötési jellemzőit, miután fluoreszcens festékkel jelölték, amikor a festék az amino-terminálishoz kapcsolódik [6] .

Felhasználás a biotechnológiában

A sztreptavidin leggyakoribb felhasználási területei közé tartozik a különböző biomolekulák tisztítása vagy kimutatása. A sztreptavidin és a biotin erős kölcsönhatása felhasználható különböző biomolekulák egymáshoz vagy szilárd hordozóhoz való rögzítésére. Szigorú feltételek szükségesek a sztreptavidin-biotin kölcsönhatás megszakításához, amely gyakran denaturálja a tisztítandó fehérjét. Kimutatták azonban, hogy egy rövid, 70 °C feletti vízben történő inkubálás reverzibilisen megszakítja a kölcsönhatást (legalábbis a biotinilált DNS esetében) a sztreptavidin denaturációja nélkül, ami lehetővé teszi a sztreptavidin szilárd hordozó újrafelhasználását [7] . A streptavidin másik alkalmazása a Strep-tag peptiddel genetikailag módosított fehérjék tisztítása és kimutatása . A sztreptavidint széles körben használják Western blottolásban és immunoassay-ben, egyes riportermolekulákkal, például torma-peroxidázzal konjugálva . A sztreptavidint a nanobiotechnológia feltörekvő területén is használták , biológiai molekulákat, például fehérjéket vagy lipideket használva nanoméretű eszközök/szerkezetek létrehozására. Ebben az összefüggésben a sztreptavidin építőelemként használható biotinilált DNS-molekulák megkötéséhez, hogy egyfalú szén nanocsövekből [8] vagy akár összetett DNS-poliéderekből [9] állványokat hozzanak létre . A tetramer sztreptavidint olyan központként is használták, amely köré más fehérjéket is el lehet helyezni egy affinitáscímkével, mint például a Strep-tag vagy az AviTag , vagy a SpyTag-gel való genetikai fúzióval [10] . A SpyTag-gel való fúzió lehetővé tette 8 vagy 20 sztreptavidin alegységből álló szerelvények létrehozását. Az atomerőmikroszkópos vizsgálatokhoz használt molekuláris erőpróbával [ 11] mellett új anyagokat is hoztak létre, például háromdimenziós kristályrácsokat [12] . A sztreptavidin gyengén savas izoelektromos pontja (pI) ~5, de a kereskedelemben kapható a sztreptavidin rekombináns formája is, amelynek csaknem semleges pI értéke.

Előre célzott immunterápia

Az előre célzott immunterápia a rákspecifikus antigének elleni monoklonális antitesthez konjugált sztreptavidint, majd radioaktívan jelölt biotin injekciót alkalmaz, hogy csak a rákos sejtbe juttasson sugárzást. A kezdeti akadályok közé tartozik a sztreptavidin biotinkötő helyek endogén biotinnal való telítése a beadott radioaktívan jelölt biotin helyett, valamint a vesék nagyfokú radioaktív expozíciója a sztreptavidin erős adszorpciós tulajdonságai miatt a sejteken. Az adherens sejttípusokhoz, például aktivált vérlemezkékhez és melanómákhoz való magas szintű kötődésről ma úgy gondolják, hogy a sztreptavidin RYD szekvenciája által közvetített integrin kötődés eredménye [13] .

Változatok szabályozott számú kötési hellyel

Monovalens vs monomer

A sztreptavidin egy tetramer, és mindegyik alegység azonos affinitással köti a biotint. A multivalencia előnyt jelent az olyan alkalmazásokban, mint például az MHC tetramer festés , ahol az aviditási hatások javítják a sztreptavidinhez kapcsolódó MHC-molekulák azon képességét, hogy specifikus T-sejteket detektáljanak [14] . Más esetekben, például a sztreptavidin használata specifikus fehérjék sejten való megjelenítésére, a polivalencia ronthatja a kérdéses fehérje működését. A monovalens sztreptavidin a streptavidin mesterségesen előállított rekombináns formája, amely tetramer, de a négy kötőhely közül csak az egyik működik. Ennek az egyetlen kötőhelynek az affinitása 10-14 mol/l, és nem okozhat keresztkötéseket [15] . A monovalens sztreptavidin alkalmazásai közé tartozik a sejtfelszíni receptorok fluoreszcencia követése , a DNS origami díszítése , valamint a krioelektronmikroszkópiás területek azonosítására szolgáló mutató .

A monomer streptavidin a sztreptavidin rekombináns formája, amely olyan mutációkkal rendelkezik, amelyek a tetramert monomerré hasítják, és növelik a kapott izolált alegység oldhatóságát. A sztreptavidin monomer változatainak biotinnal szembeni affinitása 10 -7 mol/l 10 -8 mol/l, ezért nem ideálisak jelölésre, de hasznosak tisztításhoz, ahol reverzibilitás kívánatos [16] [17] .

Két vegyértékű

Tetramerenként pontosan két biotinkötő hellyel rendelkező sztreptavidint úgy állíthatunk elő, hogy összekeverjük az alegységeket funkcionális biotinkötő hellyel és anélkül, és ioncserélő kromatográfiával tisztítjuk . A funkcionális kötőhelyek itt ugyanolyan biotinkötési stabilitást mutatnak, mint a vad típusú streptavidin. A két biotinkötő hellyel együtt (cisz-bivalens) vagy külön (transz-bivalens) rendelkező, kétértékű sztreptavidin külön is tisztítható [18] .

Háromértékű

Tetramerenként pontosan három biotinkötő hellyel rendelkező sztreptavidint is elő lehet állítani ugyanazzal az elvvel, mint a kétértékű sztreptavidinek esetében [19] .

Magas vegyértékű sztreptavidinek

Magasabb vegyértékű sztreptavidinokat állítottak elő izopeptid kötés konjugációs kémiával SpyTag /SpyCatcher technológiával [20] . Ez egy sztreptavidin-tetramerre utal, három biotinkötő hellyel és az elhalt sztreptavidinnel, amely a SpyTag-hez vagy a SpyCatcher-hez van fuzionálva. Ha különböző tetramereket keverünk össze, kovalens kötés képződik, több biotinkötő helyet biztosítva. Ezzel a módszerrel molekulánként hat és tizenkét biotinkötő helyet hoztak létre.

Összehasonlítás avidinnel

A sztreptavidin nem az egyetlen fehérje, amely nagy affinitással képes megkötni a biotint. Az avidin a másik legismertebb biotinkötő fehérje. Az eredetileg tojássárgájából izolált avidin szekvenciaazonossága csak 30%-ban van a sztreptavidinnel, de szinte azonos másodlagos, harmadlagos és kvaterner szerkezettel. Az avidinnek nagyobb affinitása a biotinhoz ( Kd ~ 10-15 M ), de a sztreptavidinnel ellentétben az avidin glikozilált, pozitív töltésű, és pszeudokatalitikus aktivitással rendelkezik (az avidin fokozhatja a biotin és a nitrofenil közötti észterkötés lúgos hidrolízisét). csoport) és nagyobb az aggregációs hajlam. Másrészt a sztreptavidin a legjobb kötőanyag a biotin-konjugátumhoz; Az avidin kötési affinitása kisebb, mint a sztreptavidin, ha a biotint egy másik molekulához konjugálják, annak ellenére, hogy az avidin nagyobb affinitást mutat a szabad, nem konjugált biotinhoz. Mivel a sztreptavidinnek nincs szénhidrát -módosítása, és szinte semleges pI -je van, előnye, hogy sokkal kisebb a nem specifikus kötődése , mint az avidin. A deglikozilált avidin (NeutrAvidin) jobban összehasonlítható méretben, pI-ben és a sztreptavidinhez való nem specifikus kötődésében.

Lásd még

Hivatkozások

  1. "Avidin". Fejlődés a fehérjekémiában . 29 , 85-133. 1975. doi : 10.1016/ s0065-3233 (08)60411-8 . ISBN  9780120342297 . PMID  237414 .
  2. "A sztreptavidin magjának kristályszerkezete a szinkrotron sugárzás többhullámú anomális diffrakciójából meghatározva". Az Amerikai Egyesült Államok Nemzeti Tudományos Akadémiájának közleménye . 86 (7): 2190-4. 1989. április. DOI : 10.1073/pnas.86.7.2190 . PMID2928324  _ _
  3. "A nagy affinitású biotin streptavidinhez való kötődésének szerkezeti eredete". tudomány . 243 (4887): 85-8. 1989. január doi : 10.1126/tudomány.2911722 . PMID  2911722 .
  4. "A femtomoláris fehérje-ligandum kötődés eredete: hidrogén-kötés kooperativitás és deszolvatációs energia a biotin-(sztrept)avidin kötőhelyen". Az American Chemical Society folyóirata . 129 (17): 5419-29. 2007. május. doi : 10.1021/ ja066950n . PMID 17417839 . 
  5. "Egy sztreptavidin variáns lassabb biotin disszociációval és fokozott mechanistabilitással". Természeti módszerek . 7 (5): 391-3. 2010. május. DOI : 10.1038/nmeth.1450 . PMID20383133  _ _
  6. "Amin tereprendezés a fehérje-festék fluoreszcencia és az ultrastabil fehérje-ligand kölcsönhatás maximalizálása érdekében". Sejtkémiai biológia . 24 (8): 1040-1047.e4. 2017. augusztus. DOI : 10.1016/j.chembiol.2017.06.015 . PMID28757182  . _
  7. "A biotin-sztreptavidin kölcsönhatás reverzibilisen megszakítható víz segítségével emelt hőmérsékleten". elektroforézis . 26 (3): 501-10. 2005. február. doi : 10.1002/ elps.200410070 . PMID 15690449 . 
  8. "Önhordó, nanopórusos, vezetőképes és lumineszcens egyfalú szén nanocső állványok biomolekulára irányított összeállítása". Kicsi . 8 (12): 1840-5. 2012. június. DOI : 10.1002/smll.201102536 . PMID  22461319 .
  9. "DNS által irányított háromdimenziós fehérjeszervezet". Angewandte Chemie . 51 (14): 3382-5. 2012. április. doi : 10.1002/anie.201108710 . PMID22374892  _ _
  10. "A SpyAvidin hubok precíz és ultrastabil ortogonális nanoösszeállítást tesznek lehetővé". Az American Chemical Society folyóirata . 136 (35): 12355-63. 2014. szeptember. doi : 10.1021/ ja505584f . PMID 25111182 . 
  11. "Nanoméretű erőszonda intermolekuláris kölcsönhatások mérésére". Angewandte Chemie . 51 (8): 1903-6. 2012. február. doi : 10.1002/anie.201107210 . PMID22253141  _ _
  12. "Fehérje rácsok létrehozása megfelelő rotációs szimmetriájú fehérjék fuzionálásával". Természet Nanotechnológia . 6 (9): 558-62. 2011. július. DOI : 10.1038/nnano.2011.122 . PMID21804552  _ _
  13. "A sztreptavidin sejttapadó tulajdonságait egy RGD-szerű RYD hely expozíciója közvetíti". European Journal of Cell Biology . 58 (2): 271-9. 1992. augusztus. PMID  1425765 .
  14. "MHC/peptid tetramer alapú vizsgálatok a T-sejtek működéséről". Journal of Immunological Methods . 268 (1): 21-8. 2002. október. DOI : 10.1016/S0022-1759(02)00196-5 . PMID  12213339 .
  15. "Egy monovalens sztreptavidin egyetlen femtomoláris biotinkötő hellyel". Természeti módszerek . 3 (4): 267-73. 2006. április. DOI : 10.1038/nmeth861 . PMID  16554831 .
  16. "Reverzibilis biotinkötő képességgel rendelkező oldható monomer sztreptavidin tervezése". The Journal of Biological Chemistry . 280 (24): 23225-31. 2005. június. DOI : 10.1074/jbc.M501733200 . PMID  15840576 .
  17. "Műszakilag kifejlesztett streptavidin monomer és dimer javított stabilitással és funkcióval". biokémia . 50 (40): 8682-91. 2011. október. doi : 10.1021/ bi2010366 . PMID21892837 _ _ 
  18. "Plug-and-play párosítás meghatározott kétértékű sztreptavidineken keresztül". Journal of Molecular Biology . 426 (1): 199-214. 2014. január. DOI : 10.1016/j.jmb.2013.09.016 . PMID24056174  _ _
  19. Dubacsova, Galina V. (2017. március 9.). „Multivalens kötés szabályozása felületi kémiával: Modelltanulmány a sztreptavidinról”. Az American Chemical Society folyóirata . 139 (11): 4157-4167. doi : 10.1021/ jacs.7b00540 . PMID28234007 . _ 
  20. Fairhead, Michael (2014. augusztus 21.). „A SpyAvidin hubok pontos és ultrastabil ortogonális nanoösszeállítást tesznek lehetővé”. Az American Chemical Society folyóirata . 136 (35): 12355-12363. doi : 10.1021/ ja505584f . PMID 25111182 . 

További olvasnivaló

Linkek

Streptavidin vagy avidin család fehérjéit kutató és fejlesztő csoportok (ábécé sorrendben)