Az orchideák kártevői és betegségei zárt térben
4 osztályba , 7 rendbe több mint 32 faj köthető az orchideafélék családjába tartozó növények kártevőihez . Több mint 90 gombáról , baktériumról és vírusról ismert, hogy orchideabetegségeket okoz: levélfoltosság , gyökérrothadás , fiatal hajtások , tuberidia , levelek és virágok [1] .
A kártevők időben történő felismerése és a kórokozók diagnosztizálása , biológiájuk és a növényekben okozott károk természetének ismerete, a hatékony leküzdési rendszer szerves részét képezik az orchidea családba tartozó növények termesztésével kapcsolatos munkák komplexumának.
A növények károsodásának okai a következők lehetnek: karanténszabályok megsértése , mezőgazdasági technológiai hibák, a növények víz- és termikus feltételeinek be nem tartása. A kórokozók fajösszetételét és kapcsolataik jellegét nagymértékben befolyásolják az orchideák florisztikai összetétele, a környezeti feltételek és a növénytermesztési feltételek: szubsztrátum, műtrágyarendszer , levegőztetés , öntözés, világítás és a folyamatos védekezési intézkedések.
Kártevők
- növényevő atkák
- Takácsatkák ( Tetranychinae ).
Leggyakrabban a következő fajok találhatók az orchideákon: Tetranychus urticae , Tetranychus turkestani , Tetranychus cinnabarinus . A Tetranychus urticae és a hasonló Tetranychus turkestani imágói sárgás színűek, lárvái, proto- és deutonimfái sárgászöldek. A Tetranychus cinnabarinusban az imágók vörösesbarnák vagy bordó színűek, a peték és a lárvák vörösesek, a proto- és deutonimfák sárgászöldek. A cymbidium , catasetum , tunia , eulopia és más növények leveleinek és bimbóinak
alsó felületén laknak . Növényi sejtnedvekkel táplálkoznak. A vereség jelei. Kis fehér pöttyök jelenléte a leveleken (főleg az alsó oldalon), valamint a növényeket (vagy azok részeit) fonó vékony pókháló jelenléte. A levél elszíneződik, szürkévé, később barnává válik. A takácsatkák védett talajban, 12 °C feletti hőmérsékleten szaporodnak. A teljes fejlesztési ciklus effektív hőmérsékleteinek összege 120 °C. A kullancsok évente 20 generációt adnak, egy generáció fejlődése 12-20 napig tart. 20°C-on az atkák 20 nap, 25°C-on 10, 32°C-on 6-6,5 nap alatt fejezik be fejlődésüket. Az optimális hőmérséklet 28-32°C és a relatív páratartalom 40-50%. Ellenőrző intézkedések. Növények permetezése akrex -szel 0,08% koncentrációban vagy izofén - 0,05, omayt - 0,1% és egyéb atkaölő szerek . Az atkák fejlődését gátolja, ha naponta 3-4 alkalommal hideg vizet permeteznek a levelek alsó felületére. A phytoseiulus ( Phytoseiulus persimilis ) ragadozó atkát a ragadozók arányában használják: zsákmány - 1:70 vagy 1:100. Ugyanakkor a védett talajban 70-80%-os relatív páratartalmat tartanak fenn [1] . Az apartmanok körülményei között az avermektin csoport legártalmatlanabb készítményei a következők: actofit , fitoverm , vermitek . Ezek a gyógyszerek nem befolyásolják a tojásokat, és nem táplálkoznak, vedlés várható, lárvák és kullancsok protonimfái. +20 °C hőmérsékleten legalább 3 kezelés szükséges 9-10 napos időközönként. +30 °C-on 3-4 kezelés 3-4 napos időközönként [2] .
- Lapos bogáratkák, vagy hamis takácsatkák , vagy lapos atkák ( Tenuipalpidae ).
A fő anatómiai különbség a takácsatkától az, hogy a testet keresztirányú varratok több részre osztják (elülső, középső és hátsó).
A leggyakoribb az üvegházi laposféreg ( Brevipalpus obovatus ). Károsítja a stangopeia , a phalaenopsis , a paphiopedilum , a calantha , a dendrobium , a cymbidium , a liparis , a cologina stb. leveleit. A nőstény téglavörös színű, teste szögletes-tojás alakú, hátfelületén hálómintás. A tojás hosszúkás-ovális, sima, élénkpiros. A lárva szélesen ovális, vörös, a nimfa hosszúkás-ovális, vörös. Zárt terepen egész évben fejlődik. A vereség jelei. A sérült levelek ezüstfehérekké válnak. A virágok deformálódnak. A levéllemez felületén halványan kis szúrások láthatók. Nagyító optikai műszerek nélkül a kullancsok gyakorlatilag láthatatlanok. Súlyos károsodás esetén a növény kiszárad. Ellenőrző intézkedések. Növények permetezése lesvel 0,05%, cymbush - 0,05, phosalone - 0,2, acrex - 0,08% és egyéb atkaölő vagy rovarölő szerek [1] . A lakások körülményei között a legártalmatlanabbak az avermektin csoportba tartozó készítmények: actofit , fitoverm , vermitek . Ezek a gyógyszerek nem befolyásolják a tojásokat, és nem táplálkoznak, vedlés várható, lárvák és kullancsok protonimfái. Minimum 4 kezelést végzünk 3-4 napos időközönként. Ezek a gyógyszerek +18 °C alatti hőmérsékleten nem fejtik ki hatásukat, és nem tárolják őket vizes oldatokban egy napnál tovább [3] . Valamivel kevésbé gyakori: Tenuipalpus pacificus - egy kifejlett kullancs testhossza körülbelül 0,25 mm, általában a phalaenopsis -t, valamint az aerides , cattleya , cypripedium, paphiopedilum , dendrobium , oncidium , vandál fajcsoportot érinti. Az üvegházi laposféregtől ( Brevipalpus obovatus ) abban különbözik, hogy a has hátsó végén egy pár hosszú vékony sörte található [4] . Egy másik gyakori lapos kullancs az oncidium lapos kullancs ( Brevipalpus oncidii ) , amely leggyakrabban a Pleione , Oncidium , Odontoglossum és Rossioglossum fajokat fertőzi meg [5] .
- Hagymaatka , vagy gyökérhagymaatka ( Rhizoglyphus echinopus ).
A kifejlett kullancsok ovális alakúak, fehérek vagy világossárgák, erős barna lábakkal. A tojásból felnőtté 26-28 °C-on történő fejlődés 9-11 nap alatt, 20 °C-on 14 nap alatt fejeződik be. A kullancs gyakrabban gyengült növényekben él, behatol a gyökerekbe, és károsítja a hajtások alapját is.
Ellenőrző intézkedések. Növények permetezése atkaölő szerekkel. A sérült növényi részeket levágják és megsemmisítik [6] .
- Rovarok
- Levéltetvek .
Az üvegházi levéltetű ( Myzus persicae ) a leggyakoribb. Károsítja a Dendrobium , Selenipedium , Lycaste , Cattleya , Vanda virágzatát . Nyáron a répalevéltetű ( Aphis fabae )a phragmipedium , cymbidium , dendrobium bimbóin és virágain. Az orchidea-levéltetű ( Cerataphis orchidearum )gyakran megtelepszik a cologina virágain , míg az üvegházi levéltetű ( Aulacorthum circumflexsus ) a bletilla virágokon fejlődik. Ellenőrző intézkedések. Növények permetezése lesvel 0,05% koncentrációban, cymbush - 0,05, actellik 0,2%, dohány infúziója szappannal. A ragadozó epeszúnyog afidimimizu ( Aphidoletes aphydimysa ) 1:50-es ragadozó-zsákmány arányban használatos [1] . A szobanövények védelme érdekében kevésbé mérgező fitoverm készítmény.
- Coccidae , vagy lisztbogarak és pikkelyes rovarok .
Az orchideákon megtalálhatók az orchidea-pikkelyrovarok ( Pseudoparlatoria parlatarioides ), a bromélia- pikkelyrovarok ( Diaspis bromeliae ), a lágypikkelyes rovarok (Coccus hesperidum ), a tengerparti lisztbogár ( Pseudococcus maritimus ) és más fajok. Ezek a rovarok a leveleken, különösen a hónaljban, a száron és a kocsányokon, a burkolópikkelyek alatti tuberidiákon telepednek meg. Táplálkozásuk helyén világossárga kis foltok képződnek, később nyomott barnák, barnák vagy bíborlilák. A férgek és a pikkelyes rovarok sok mézharmatot bocsátanak ki , amely bőségesen beborítja a növényt. Kormos gombák ( Capnopodium ) fejlődnek ki rajta, aminek következtében a növényen fekete ragacsos foltok jelennek meg.
Károsítanak minden típusú orchideát, különösen a dendrobium , cymbidium , paphiopedilum , cattleya , stangopeia , playone , bletille .
Ellenőrző intézkedések. Háromszori permetezés 7-10 nap után fozalonnal 0,3% koncentrációban, csapda - 0,05, cymbush - 0,05%. A Cryptolemus ( Cryptolaemus montrouzieri ) ragadozóbogár 1:50-es ragadozó- és zsákmányaránnyal hatékonyan küzd a lisztbogarak ellen [1] . A szobanövények védelme érdekében kevésbé mérgező fitoverm készítmény használata javasolt .
- Thripsz
A kifejlett rovarok testhossza 2-2,5 mm. Két pár szárnya van. Nyugodt állapotban a rovar hátán keskeny világos csíkba vannak hajtva, és gyakorlatilag láthatatlanok. A felnőtt rovarok általában sötét színűek - fekete vagy barnás. A legtöbb faj lárvái sárgák vagy zöldesek, alig láthatók a levéllemez felületén. Két faj fordul elő leggyakrabban az orchideákon: az üvegházi tripsz ( Heloithrips haemorrhoidalis ) és a dohánytripsz (Trips tabaci ). Titkos életet élnek. Virágok, levelek és tuberidiák érintettek . A sérült leveleken jellegzetes ezüstös szín jelenik meg pöttyös, sötét ürülék tömegével. Idővel az érintett területek megbarnulnak. A tripszek a levélszövetbe rakják tojásaikat. Leggyakrabban a tunia , cymbidium , epidendrum , fayus , anguloa , stenorhynchus ,spatoglottis, catasetum stb . károsodik . A növények háromszori permetezése actellikkel 0,2%, hostaquikkal - 0,1%, izatrinnal - 0,1% vagy más szisztémás rovarölő szerekkel , 10 napos permetezési időközzel. Az amblyseius ragadozó atka ( Amblyseius mackenziei ) a ragadozó és a zsákmány arányában is hatékony - 1:25 [1] A szobanövények védelmére kevésbé mérgező fitoverm készítmény.
- Üvegházi szöcske ( Tachycinrs asynamorus ).
- Gombaszúnyogok - Sciarida ( Sciaridae ).
E hatalmas család egyes fajainak lárvái károsíthatják a növények gyökereit. Előfordultak olyan esetek, amikor a gyökerező phalaenopsis dendrobium és néhány más orchideafaj gyökérmerisztémáját felfalták. [7] .
- Gyomorlábúak .
Éjszaka táplálkoznak, nappal különféle menedékhelyeken bújnak meg. Megeszik a növény bármely érzékeny részét. A nagy csigák és meztelen csigák könnyen felismerhetők a növényen maradt ezüstös iszapból. Ha a növényt 15-30 percre vízbe merítjük, kis csigákat találunk az aljzatra mászva. Az orchidea gyökereit gyakran károsítja a Zonitoides arboreus csiga . Ennek a fajnak a 2-3 kifejlett csigája, amely egy cserépben él egy növénnyel, elegendő ahhoz, hogy komoly gyökérkárosodást okozzon. Puhatestű ölőszerkénta következő gyógyszereket használják: Mesurol (Mesurol), Sluggo, Slug-fest, Durham, Schneckenkorn vagy Metaldehyde ( "Meta" vagy " Thunderstorm " védjegyek) három-négy hetente [8] .
- Fatetű .
A növény minden része sérült. A fatetűt burgonyából, almából és erjesztett sörből készült csalikkal fogják. A növényeket 0,05% koncentrációjú lesben vagy 0,2-0,3% koncentrációjú foszalonnal permetezzük.
- Kivsyaki .
Károsítják az érett növények gyökereit és a fiatal növények minden részét. Ellenőrzési módszerek, lásd Woodlice.
- Springtails , vagy podura ( Collembola ).
Károsítják a palánták gyökereit, nem veszélyesek a felnőtt növényekre.
Betegségek
- Fekete rothadás .
A kórokozók gombák : Pythium ultimum , Pythium debaryanum , Phytophthora omnivora . Ezek a növényfajok bármely életkorban érintettek. A tuberidium gyökereinek és tövének legveszélyesebb rothadása . Ennek eredményeként az egész növény elpusztul. A betegség góc jellegű, és gyorsan átterjed a beteg növényekről az egészségesekre. Az érintett szövetek elfeketednek. A tuberidiák mumifikálódnak. A betegség terjedését elősegíti a levegő és a talaj szubsztrátumának alacsony hőmérséklete és magas páratartalma, amikor a gyökérrendszer lassan fejlődik, és a gyökér egyes részei a levegő hiánya és a vizes aljzat miatt elpusztulnak és hozzáférhetővé válnak a kórokozók számára. gombák. A Cattleya , Stangopeya , Lelia , Leliocattleya , Paphiopedilum a fekete rothadás által érintett .
Ellenőrző intézkedések. A párásítási feltételek optimalizálása. Növények permetezése és öntözése rézkészítményekkel : réz-klorid 0,5% koncentrációban, homecin - 0,4, réz-szulfát 1: 100 000 hígításban. A beteg növényt elpusztítják [1] . A gombaölők lassítják a betegség kialakulását.
- Gyökérrothadás .
Kórokozók: Fusarium oxysporum , Fusarium solani var. argillaceum , Fusarium sporotrichiella , Fusarium javanicum stb.
Az érintett gyökerek, tuberidiák és levelek rothadnak, meglágyulnak és megbarnulnak. A betegség kórokozói károsodáson keresztül behatolnak a gyökerekbe. A betegséget Cymbidium , Paphiopedilum , Vanda , Miltonia és Odontonia esetében észlelték . Ellenőrző intézkedések. A termesztési feltételek optimalizálása. A növények háromszori öntözése és permetezése 0,2%, topsin - M - 0,2%, benomil - 0,2% koncentrációjú alapazol - szuszpenzióval 10 napos időközönként [1] .
- Barna rothadás .
A kórokozók az Erwinia , Pseudomonas stb. nemzetséghez tartozó baktériumok . A fiatal levelek és hajtások gyakrabban érintettek. Vizes, világos és sötétbarna foltok jelennek meg rajtuk, gyorsan növekvő méretben. Ha a szár és a növekedési pont érintett, az egész növény elpusztul. A bakteriális rothadás túlzott nedvesség jelenlétében alacsony levegőhőmérsékleten halad előre. Cattleya , cymbidium , phalaenopsis , paphiopedilum érintett . A súlyosan érintett növények elpusztulnak. A helyi foltokat egészséges szövetekre vágják ki, a vágási pontokat zúzott szénnel borítják. Javítja a higro- és termo-üzemmódot. Megelőző intézkedésként a réz alapú készítményeket permetezzük [1] .
- Fusarium rothadás .
A kórokozó a Fusarium moniliforme var. lactis . Foltosodást és levélrothadást okoz, tuberidium, a hajtás központi növekedési pontja. A kalanta parazita levelei sárgulnak, később sötétszürkévé válnak. A levélszövet meglágyul, és fehéres-rózsaszín virág formájában a gomba spóráival borítja be. A levelek széle kiszárad és felkunkorodik. A cymbidium levelein elmerült sötétbarna foltok képződnek. A központi hajtás elrothad és elhal. Az angrekum , az epidendrum , a vanda , a miltonia is érintett .
A védekezési intézkedések ugyanazok, mint a gyökérrothadásnál [1] .
- Szürke rothadás .
A kórokozó a Botrytis cinerea . Virágokat fertőz. A szirmokon apró barna foltok jelennek meg, később a rothadás átterjed az egész virágra. A fiziológiailag legyengült növények gyakrabban érintettek. A túlzott relatív páratartalom és az alacsony hőmérséklet a betegség terjedésének fő feltételei. Túlnyomóan fehér virágú Grex Cattleya , Phalaenopsis , Cymbidium érintett .
Az érintett virágok elpusztulnak. Csökkentse a levegő páratartalmát, növelje a hőmérsékletet és javítsa a szellőzést [1] .
- Antraknózis .
A kórokozók - a Colletotrichum , Gloeosporium , Cladosporium nemzetséghez tartozó gombák a leveleket, a hajtásokat és a tuberidiákat érintik. Különböző méretű barna foltok, egyértelműen az egészséges szövetektől korlátozottak, kis fekete pontokkal - rajtuk a gomba piknidiumai képződnek. Az érintett levél mozaik színűvé válik és elhal.
A betegség kialakulását elősegíti a magas relatív páratartalom és hőmérséklet. A fertőzés a növények permetezése és öntözése során vízcseppekkel terjed. A cymbidium, a cattleya, a dendrobium, a stangopea és más orchideák érintettek.
Az érintett leveleket levágják. Csökkentse a nitrogén műtrágyák használatát. Betegség esetén a növényeket 0,2%, topsin-M - 0,2%, réz-oxi-klorid - 0,5% koncentrációban és egyéb gombaölő szerekkel permetezzük 2-3 alkalommal 10 napos időközönként, profilaktikusan havonta egyszer [1] .
- Rozsda .
A kórokozók az Uredo - Uredo behnickiana , Uredo nigropuncta nemzetséghez tartozó gombák . A különböző típusú orchideákban a károsodás jelei eltérőek. Gyakran megfigyelhető a levélklorózis . Cattleya, epidendrum, oncidium, blethia, stangopea érintett. A kórokozókat Kubából importálják . A beteg növényeket megsemmisítik [1] .
- Levélfoltosság .
Kórokozók: Alternaria sp. , Cercospora angreci , Cercospora odontoglossi , Chaetodiplodia sp. , Coniothyrium sp. , Corynespora cassiicola , Diplodia laelio-cattleyae , Diploida paraphysaria , Fulvia fulva , Lasiodiplodia theobromae , Leptothyrium sp. , Phoma oncidii-sphacelati , Phyllosticta capitalensis , Pseudocercospora sp. , Septoria selenophomoides [9] .
- Vírusok
Jelenleg több mint 50 vírusról ismert, hogy megfertőzi az orchideákat [10] .
- A Cymbidium mozaikja (Cymbidium mosaic virus (CymMV)).
A kórokozó a cymbidium black streak vírus (Flexiviridae család , Potexvirus nemzetség ). A fiatal leveleken a klorotikus foltok és ütések a levél központi vénájával párhuzamosan helyezkednek el. A betegség előrehaladtával a ütések és foltok határozottabbá és sötétebbé válnak. A régi levelekre jellemző az érintett szövetek nekrózisa . A növények lemaradnak a növekedésben, a virágzás intenzitása csökken. A fertőzést levéltetvek, a növények vegetatív szaporítása során, valamint a levelek és virágzatok metszésekor szerszámok terjesztik. Ellenőrző intézkedések. Vágóeszközök sterilizálása 70%-os alkohollal. Beteg növények selejtezése [1] [11] [12] .
- Az Odontoglossum ringspot virus (ORSV) a Tobamovirus nemzetségbe tartozik .
Ritkábban fordul elő, mint a cymbidium mozaikok. A betegség a leveleken és a virágokon foltok megjelenésével nyilvánul meg [13] .
- Cattleya mozaikja .
A virágok károsodásának legjellemzőbb tünete a tarkaság, deformáció, a leveleken - enyhe foltosodás, kloroticitás és deformáció [1] . Az American Phytopathological Society listája szerint a Cattleyas-t két vírus érinti: Odontoglossum ringspot virus (ORSV) és Cymbidium mozaikvírus (CymMV) [9] .
- nem fertőző betegségek .
Az egyenetlen öntözés, a túlzott napfény okozta túlmelegedés, a peszticidek alkalmazása , a kiegyensúlyozatlan táplálkozás és a terméshibák számos levélfoltot, levélvégek zsugorodást, gyökérpusztulást és egyéb szövetkárosodást okozhatnak.
Megelőző és növény-egészségügyi intézkedések
A növények növekedésének és fejlődésének szabályozására szolgáló módszerek nemcsak a magas mezőgazdasági technológiából állnak, hanem az agrotechnikai vagy egyéb intézkedések adaptálásából is, amelyek kedvezőtlen feltételeket teremtenek a kártevők szaporodásához és a növényi betegségek kialakulásához.
Az új kártevők és kórokozók betelepülésének megakadályozása érdekében minden beérkező ültetési anyagot alapos entomofitoptológiai vizsgálatnak vetnek alá. Továbbá a növényi anyagot peszticidekkel fertőtlenítik, és 2-3 hónapig elkülönítik a gyűjteménytől, a növények állapotának tíznapos megfigyelésével.
Egészségügyi és higiéniai intézkedések:
- Növények telepítése fa, fém vagy műanyag rácsokra, hogy megakadályozzuk a gyökérrothadás kórokozóinak növényről növényre történő átjutását öntözővízzel.
- Edények, téglalapok és egyéb újrahasznosítási célú tartályok fertőtlenítése 1,5%-os réz-szulfát oldattal.
- Beteg és súlyosan károsodott növények selejtezése.
- A gyomok (a fitofág populációk tartalékai ) elpusztítása üvegházakban és üvegházakban.
- A mechanikus kártevőirtási intézkedések rendszeres alkalmazása:
- csapdás csalétek használata erdei tetvek és meztelen csigák ellen,
- a növények dörzsölése 40%-os alkohollal vagy tűlevelű kivonat oldatával (20 g/1 liter víz), hogy csökkentse a pajzstetűk, hamis pikkelysömörök és lisztbogarak számát.
- Biológiai módszerek alkalmazása:
- paraziták és ragadozók (Phytoseiulus ( Phytoseiulus persimilis), ciklonos ( Cycloneda limbifer ), Aphidius ( Aphidis matricariae ), Cryptolemus ( Cryptolaemus montrouzieri ) betelepítése és akklimatizációja ,
- fitoncid növények használata ,
- antagonista növények használata a gyökérrothadás kórokozóinak leküzdésére .
- A megelőző intézkedések alacsony hatékonysága, valamint a kártevők és kórokozók által okozott súlyos növénykárosodás magas kockázata miatt áprilisban és október végén kettős kezelést végeznek védett talajban használható növényvédő szerek kombinált keverékével [1 ] [6] .
Jegyzetek
- ↑ 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 15 16 Cherevchenko T. M. Trópusi és szubtrópusi orchideák - Kijev: Naukova Dumka, 1993.
- ↑ Mishustin R.I., takácsatka (Tetranychinae). Cikk a senpolia.ru oldalon . Hozzáférés dátuma: 2009. július 13. Az eredetiből archiválva : 2009. augusztus 28.. (határozatlan)
- ↑ Mishustin R.I., Lapos kullancs (Tenuipalpidae). Cikk a senpolia.ru oldalon . Letöltve: 2009. július 13. Az eredetiből archiválva : 2009. április 22.. (határozatlan)
- ↑ Mishustin R. I., Enikeev P. F., Phalaenopsis kullancs - Tenuipalpus pacificus Baker. Cikk a dimetris.com.ua oldalon . Letöltve: 2013. február 13. Az eredetiből archiválva : 2013. február 16.. (határozatlan)
- ↑ David Harberd. Az Alpesi Kert Társaság Értesítője (66. évf. 4. szám 480-483. oldal)
- ↑ 1 2 Iljinszkaja M. I. Üvegházi növények kártevői. - M .: A Szovjetunió Tudományos Akadémia Kiadója, 1963. - 131 p.
- ↑ Mishustin R. I., Mishustin T. Yu., Enikeev P. F., Gombaszúnyogok - Sciarida (Sciaridae). Cikk a dimetris.com.ua oldalon . Hozzáférés dátuma: 2013. február 14. Az eredetiből archiválva : 2013. július 24. (határozatlan)
- ↑ Robert G. Hollingsworth1 és Kelvin T. Sewake. Az orchidea csiga, mint az orchideák kártevője Hawaiin. 2002 . Hozzáférés dátuma: 2009. július 24. Az eredetiből archiválva : 2009. július 11. (határozatlan)
- ↑ 1 2 A Cattleya betegségek gyakori elnevezései. Az Amerikai Fitopatológiai Társaság honlapja. Archiválva az eredetiből 2007. február 2-án.
- ↑ Chang C, Chen CY, Hsu YH, Wu JT, Hu CC, Chang WC és Lin NS 2005 Transzgenikus rezisztencia Cymbidium mozaikvírussal szemben a vírus kapszid fehérje génjét expresszáló dendrobiumban; Transgenic Res. 14 41-46
- ↑ Ang Rinzing Sherpa, Vipin Hallan, Promila Pathak és Aijaz Asghar Zaidi (2007. június). A Cymbidium mozaikvírus indiai izolátumának teljes nukleotidszekvencia elemzése: további bizonyítékok a potexvírusok közötti természetes rekombinációra". Journal of Biosciences: 657-661. . Hozzáférés dátuma: 2009. július 14. Az eredetiből archiválva : 2011. május 24.. (határozatlan)
- ↑ H.U.J.S.; FERREIRA S. ; Wang M.; XU MQ (1993). "A Cymbidium mozaikvírus, az Odontoglossum gyűrűsfoltos vírus, a paradicsomfoltos hervadás vírusa és a hawaii orchideákat fertőző potyvírusok kimutatása". 464-468. . Letöltve: 2009. július 14. Az eredetiből archiválva : 2012. március 14.. (határozatlan)
- ↑ Archivált másolat (a hivatkozás nem elérhető) . Letöltve: 2009. június 9. Az eredetiből archiválva : 2009. május 15. (határozatlan) JS Hu, S Ferreira, M Wang, MQ Xu (1993), "Detection of Cymbidium mosaic virus, odontoglossum ringspot virus, tomato spotted wilt virus, and Potyviruses Infecting Orchids in Hawaii", Plant Disease 77 (5): 464-468
Irodalom
- Dorokhova G. I., Vereshchagina A. B., Velikan V. S., Sorokina A. P. et al. Kulcs a zárt talaj káros és hasznos gerinctelenek számára / V. A. Pavlyushin. - Szentpétervár. , 2003.
- Akhatov A.K., Jalilov F.S. et al.: Növények védelme a betegségektől üvegházakban. Könyvtár. - M . : A KMK tudományos publikációinak partnersége, 2002. - 464 p.
- Szerk. d.b.n. Izhevsky S. S. és Akhatov A. K. Üvegházi és üvegházi növények védelme a kártevőktől. Könyvtár. Fajok azonosítása, kimutatási és számviteli módszerek, biológia és morfológia, ártalmasság, küzdelem. - M. : KMK Scientific Press Ltd, 1999. - 399 p.
- Zhuravlev II Virágnövények betegségei . - L . : A Leningrádi Egyetem Kiadója, 1973. - 80 p.
- Ilyinskaya M.I. Üvegházi növények kártevői. - M .: A Szovjetunió Tudományos Akadémia Kiadója, 1963. - 131 p.
- Cherevchenko T. M. Trópusi és szubtrópusi orchideák - Kijev: Naukova Dumka, 1993.
- Navalinskene, M., Samuitene, M. (2007) A Cymbidium sw. nemzetség orchideáinak fertőzése. dohánycsörgő vírus. A TVGU közleménye. Sorozat: Biológia és ökológia (4). oldal 35-37. ISSN 1995-0160
- HuJS ; Ferreira S.; Xu MQ ; Lu M.; Iha M.; Pflum E.; Wang M. (1994. április 23.). "Cymbidium mozaik és odontoglossum gyűrűfoltos vírusok átvitele, mozgása és inaktiválása". Növénybetegség (Plant dis.) 78(6): 633-636. ISSN 0191-2917
Linkek